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紫果西番莲果皮花色苷鉴定及其生物活性

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发表于 2021-2-21 19:15:04 | 显示全部楼层 |阅读模式
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紫果西番莲果皮花色苷鉴定及其生物活性紫果西番莲果皮花色苷鉴定及其生物活性
何 丹1,孔钰婷1,宋洪波1,2,*,安风平1,黄 群1,2
(1.福建农林大学食品科学学院,福建 福州 350002;2.福建农林大学 福建省特种淀粉品质科学与加工技术重点实验室,福建 福州 350002)
摘 要:为开发利用紫色西番莲果皮中花色苷,以‘紫香1号’紫果西番莲果皮为原料,对其中花色苷组成进行初步鉴定,评估花色苷粗提物和纯化样品的抗氧化活性及其对2型糖尿病相关酶活力的抑制能力,并对其体外生物利用度进行研究。结果表明,紫果西番莲果皮花色苷纯化样品中总花色苷含量为(122.31±1.31)mg/g,共鉴定出12 种花色苷。花色苷纯化样品在抗氧化能力,对α-淀粉酶、α-葡萄糖苷酶的抑制效果和体外生物利用度方面均显著优于花色苷粗提物。
关键词:紫果西番莲;果皮;花色苷;鉴定;抗氧化
西番莲(Passiflora edulis)原产于南美洲,在许多热带和亚热带国家均有种植,是最受欢迎的浓郁芳香水果之一,近年来在我国广西、广东、江西及福建等省已规模种植。西番莲具有丰富的营养成分及促健康作用[1],目前其加工以果汁和浓缩果汁为主[2],果皮(占果实质量的50%~55%)通常被废弃。研究报道,紫果西番莲果皮中含有丰富的果胶、膳食纤维、黄酮类化合物及花色苷,其花色苷含量比蓝莓、桑葚和葡萄等水果高[3-5]。花色苷是天然色素的主要成分之一,可赋予水果、蔬菜和花卉等植物蓝色、红色和紫色[6]。研究表明,花色苷能够改善胰岛素抵抗和保护β细胞[7],作用机制主要与其抗氧化活性有关,也可能与对酶的抑制作用或其他途径存在关联[8];此外,花色苷还能够抑制和减少促炎细胞因子的分泌,使其具有一定的抗炎[9]和抗糖尿病活性[10]。本研究旨在明确紫果西番莲果皮中花色苷的组成,评估其中花色苷的体外抗氧化活性及其对2型糖尿病相关酶活力的抑制作用,通过模拟胃肠道消化对其生物利用度进行初步研究,以期为紫果西番莲果皮中花色苷的开发利用提供科学依据。
1 材料与方法1.1 材料与试剂
‘紫香1号’紫果西番莲购于福建省龙岩市漳平市拱桥镇。
无水乙醇、盐酸、氯化钾和无水乙酸钠(均为分析纯)国药集团化学试剂有限公司;矢车菊素-3-葡萄糖苷(cyanidin-3-glucoside,C3G) 法国Extrasynthese公司;D101型大孔吸附树脂 艾美科健(中国)生物医药有限公司;α-淀粉酶(50 U/mg)、α-葡萄糖苷酶(50 U/mg)、胃蛋白酶(30 000 U/mg)、胆汁盐、胰蛋白酶(2 500 U/mg)、1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl,DPPH)、对硝基苯基-α-D-吡喃葡萄糖苷(p-nitrophenylα-D-glucopyranoside,PNPG)、3,5-二硝基水杨酸(3,5-dinitrosalicylic acid,DNS) 上海源叶生物有限公司;2,2’-联氮-双(3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸)二铵盐(2,2’-azino-bis(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid)diammonium salt,ABTS) 阿拉丁试剂(上海)有限公司。
1.2 仪器与设备
TGL-16型台式高速冷冻离心机 四川蜀科仪器有限公司;1260型高效液相色谱仪、6520型高效液相色谱-四极杆飞行时间-串联质谱(high performance liquid chromatography quadrupole-time-of-flight-tandem mass spectrometry,HPLC-QTOF-MS/MS) 美国安捷伦公司;UV-1780紫外-可见分光光度计、Inertsustain C18柱(250 mm×4.6 mm,5 μm) 日本岛津公司;定制玻璃层析柱(170 cm×5 cm) 福州昱安正茂玻璃仪器有限公司。
1.3 方法
1.3.1 紫果西番莲果皮的处理
将紫果西番莲果皮用40 ℃热风干燥至水分质量分数为(8.0±0.5)%,粉碎后过40 目(0.45 mm)筛,于-18 ℃避光保存备用。
1.3.2 紫果西番莲果皮花色苷的提取
未来怎样通过合理的布局产品库存,采用不押款、零库存且相对较低的价格销售,减少农民投入,这不是农资行业一直要实现的事情吗?这些年,农资产品随着政策,市场的变化,探索者各式各样的销售方式,赊销是分销商最头疼的事情。
称取100 g样品与5 L体积分数60%乙醇溶液(含体积分数0.1% HCl)于烧杯中混合,保鲜膜封口,于黑暗环境下提取24 h,(0.097±0.005)MPa减压抽滤进行固液分离,固体残渣在上述条件下重复提取3 次,合并滤液。滤液于2 555×g、20 ℃离心10 min,(38±1)℃减压浓缩((0.097±0.005)MPa)并回收乙醇,将浓缩液冷冻干燥,即为粗提物。于-18 ℃避光保存备用。
1.3.3 紫果西番莲果皮花色苷的纯化
用蒸馏水将花色苷粗提物配制质量浓度为(17.35±0.62)mg/L的溶液。层析柱填料为D101型大孔吸附树脂,床体积为2 L;上样流速5 mL/min,泄漏量为10%时停止上样;先用10 L、pH(2.5±0.05)的HCl溶液以10 mL/min的流速进行洗脱;再用4 L、pH(2.50±0.05)体积分数90%乙醇溶液以5 mL/min的流速进行洗脱,收集洗脱液。将洗脱液于(38±1)℃下减压浓缩((0.097±0.005)MPa),冷冻干燥制得纯化样品。
为了引导员工认清任务重点,高效达成绩效指标,选择适合中小企业掌握的主观经验法和各级指标配对比较的方式,通过借鉴各类企业对不同岗位知识型员工的权重设置,在此期间始终结合公司的经营重点并收集员工意见,对初步确定的指标权重经过多次合理变更,最终形成规范的指标体系。
1.3.4 紫果西番莲果皮总花色苷含量测定
采用美国分析化学家协会分析方法中的pH示差法测定紫果西番莲果皮花色苷粗提物和纯化样品中的总花色苷含量。
1.3.5 HPLC-二极管阵列检测紫果西番莲果皮花色苷中C3G的含量
用甲醇配制质量溶度为1 mg/mL的样品溶液,过0.45 μm滤膜待测。色谱条件:色谱柱:C18柱(250 mm×4.6 mm,5 μm);流动相A:体积分数0.3%甲酸-水溶液,流动相B:乙腈;洗脱梯度:0~10 min、13%~25% B;10~12 min、25%~20% B;12~22 min、20%~13% B;检测波长520 nm;柱温25 ℃;流速1 mL/min;进样量10 μL;外标法定量。
忘了忘了。她手忙脚乱合上盖子。我只顾着吃草莓了。她带着哭腔。谢谢公司,我以后会加倍努力的!Everything in touch,不会辜负公司对我的期望的!
1.3.6 HPLC-QTOF-MS/MS鉴定紫果西番莲果皮花色苷组分
色谱条件与1.3.5节一致。MS条件:正离子模式;雾化器压力40 psi;干燥器温度350 ℃;气体流量10 L/min;毛细管电压3 500 V;裂解电压135 V;全扫描;扫描范围m/z 50~1 200[11]。
1.3.7 紫果西番莲果皮花色苷体外抗氧化活性测定
1.3.7.1 DPPH自由基清除活性
参照Brand-Williams等[12]的方法,取0.1 mL不同质量浓度的样品溶液(花色苷粗提物、纯化样品和VC)和3.9 mL 0.063 4 mmol/L DPPH-无水乙醇溶液混合,避光反应30 min,用紫外-可见分光光度计于515 nm波长处测定溶液吸光度。空白组以3.9 mL无水乙醇溶液代替DPPH溶液。对照组以0.1 mL无水乙醇代替样品溶液。紫果西番莲果皮花色苷粗提物和纯化样品DPPH自由基清除率按式(1)计算,并计算DPPH自由基半抑制浓度(half inhibitory concentration,IC50)。
创新报告显示,在老年人政策创新上,上海、北京养老创新政策全国领先。2017年中国老年人政策省级创新指数排名前10位的省市区依次是上海、北京、河北、江苏、吉林、天津、福建、广东、陕西、辽宁。从地区分布来看,东部地区有7个省份,西部地区有1个省份,东北部地区有2个省份。
   
式中:A0为对照组溶液吸光度;A1为样品组溶液吸光度;A2为空白组溶液吸光度。
1.3.7.2 ABTS阳离子自由基清除活性
参照Re等[13]的方法,将20mL 7 mmol/L的ABTS溶液与350 μL 140 mmol/L的过硫酸钾溶液混合,室温下避光反应14 h,制成ABTS储备溶液。取15 μL用甲醇配制的不同质量浓度的样品溶液(花色苷粗提物、纯化样品和VC)与185 μL ABTS储备溶液混合,避光反应30 min,用紫外-可见分光光度计于734 nm波长处测定溶液吸光度。空白组以185 μL甲醇溶液代替ABTS储备溶液,对照组以15 μL甲醇溶液代替样品溶液。根据式(1)计算ABTS阳离子自由基清除率,并计算ABTS阳离子自由基IC50。
1.3.7.3 铁离子还原能力
“恰好这时,他给我发了私信,我看了他的照片,胖胖的,觉得比较有亲和力。”张伦靠外形攻下一垒。再看专业,“我学动画,他也学动画。”专业再加分。从私信到微信,从陌生到熟悉,一切似乎顺理成章。
参照Sarkar等[14]的方法并稍作修改,采用铁离子还原能力(ferric ion reducing antioxidant power,FRAP)法测定。将300 mmol/L pH 3.6的醋酸盐缓冲溶液、10 mmol/L二硫苏糖醇溶液和20 mmol/L FeCl3溶液按体积比10∶1∶1混合配制成FRAP溶液。以FeSO4浓度为横坐标,吸光度为纵坐标,绘制标准曲线,回归方程为Y=0.387 6X+0.184 3(R2 =0.999 6),线性范围为0.1~1.5 mmol/L。取0.1 mL不同质量浓度的样品溶液(花色苷粗提物、纯化样品和VC)和3.0 mL FRAP溶液混匀,避光反应4 min后于593 nm波长处测定溶液吸光度。将吸光度代入FeSO4标准曲线,将所得相应的FeSO4浓度定义为FRAP,单位为mmol/L。
在进行高校学生党建工作的过程中,重视理论教育非常重要,组织实践活动也必不可少。但是,在目前高校学生党建工作中,普遍存在着重视理论教育,忽视实践活动的现象,同时高校对学生的考核过程中,仅仅进行基础理论知识的考核,但是却没有对学生的实践活动进行考核,从而导致学生只重视理论课程的学习,忽视实践活动的重要性。
1.3.8 紫果西番莲果皮花色苷对α-淀粉酶及α-葡萄糖苷酶的抑制作用
1.3.8.1 α-淀粉酶活性抑制率
参考文献[15]中的方法并略作改动。500 μL 1 U/mL的α-淀粉酶溶液与500 μL 1 mg/mL的样品溶液(花色苷粗提物和纯化样品)混合,37 ℃预热10 min,加入500 μL 1 g/100 mL可溶性淀粉溶液(预先溶于pH 6.9的磷酸盐缓冲液(phosphate buffered saline,PBS)并煮沸15 min),37 ℃孵育3 min,加入1 mL DNS显色剂,于100 ℃水浴5 min,冷却后将混合物用超纯水稀释4 倍,于520 nm波长处测定吸光度。以pH 7 PBS代替酶溶液为样品对照,以pH 7 PBS代替样品溶液为空白组;以不添加样品溶液和酶溶液作为空白对照组。按式(2)计算α-淀粉酶活性抑制率。以阿卡波糖为阳性对照,将计算结果除以阿卡波糖对α-淀粉酶抑制率(测定条件相同),紫果西番莲果皮花色苷对α-淀粉酶的抑制率以相对于阿卡波糖的抑制率表示。
   
1.3.8.2 α-葡萄糖苷酶活性抑制率
参考Mojica等[16]的方法并稍作修改。在96 孔板中加入50 μL 1 mg/mL样品溶液和100 μL 1 U/mL的α-葡萄糖苷酶溶液,37 ℃孵育10 min;加入50 μL 5 mmol/L的PNPG溶液,37 ℃下孵育5 min,于405 nm波长处测定吸光度。按式(2)计算抑制率。以阿卡波糖为阳性对照,将计算结果除以阿卡波糖对α-葡萄糖苷酶抑制率(测定条件相同),紫果西番莲果皮花色苷对α-葡萄糖苷酶的抑制率以相对于阿卡波糖的抑制率(%)表示。
1.3.9 紫果西番莲果皮花色苷的体外生物利用度测定
参考Sengul等[17]的方法并略作改动。将20 mg样品溶解在20 mL pH 1.7的HCl溶液中,加入25.2 mg胃蛋白酶,37 ℃、100 r/min搅拌2 h,再加入500 mg胆汁盐和18 mg胰蛋白酶进行体外模拟消化。向长5 cm的纤维素透析管(截留分子质量12 kDa)中加入5.6 mL 0.75 mol/L NaHCO3溶液,并将其放入消化液中保持2 h。进入管内的溶液代表在体内吸收并进入血清的样品,通过pH示差法分析进入血清样品的总花色苷含量。根据式(3)计算花色苷的体外生物利用度。
   
式中:m1为进入透析管内溶液中的花色苷质量/mg;m2为样品中花色苷的初始质量/mg。
[37] Benjamin K. Wagner, “Lessons from Lassen: Plotting a Proper Course for Freedom of Navigation Operations in the South China Sea”, Journal of East Asia & International Law, Vol. 9, Issue 1 (2016).
1.4 数据处理与分析
每组实验重复3 次,结果用平均值±标准差表示;采用Graphpad prism 8.0.2软件进行单因素方差分析和t检验,P<0.05认为差异有统计学意义。
2 结果与分析2.1 紫果西番莲果皮中花色苷含量及鉴定     
图1 紫果西番莲果皮花色苷纯化样品及C3G标准品的HPLC图
Fig. 1 High performance liquid chromatography of purified anthocyanins from Passi flora edulisSims peel and C3G standard

表1 紫果西番莲果皮花色苷的含量及纯度
Table 1 Anthocyanin contents and purity of crude and purified anthocyanins from Passi flora edulis Sims peel
     
注:同列小写字母不同表示差异显著(P<0.05)。表3同。
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紫果西番莲果皮中花色苷粗提物的得率为(3.94±0.11)mg/g。通过比较纯化样品与C3G标准品的保留时间(图1),可以初步推断紫果西番莲果皮中的主要花色苷为C3G,这与文献[17]报道的结果一致。由表1可知,纯化样品中总花色苷含量较粗提物提高了(102.27±1.09)mg/g,回收率为(77.87±0.80)%,C3G纯度由(51.17±1.97)%提高到(65.26±2.47)%。由此表明通过D101型大孔树脂柱层析进行紫果西番莲果皮花色苷的初步纯化是可行的。
     
图2 紫果西番莲果皮花色苷的总离子流图
Fig. 2 Total ion current chromatogram of anthocyanins in Passiflora edulis Sims peel

采用HPLC-QTOF-MS/MS对纯化样品中的花色苷组分进行结构鉴定。误差质量(δ)作为异核多键相关谱的一个重要特征,按照δ<3对化合物结构进行确认[20],紫果西番莲果皮中花色苷各组分总离子流图如图2所示。理论上,花色苷的糖苷化可以在任意位的羟基上发生,但是某些羟基位置是被优先选择的,如3-OH和5-OH常被糖基取代,而这两者相比时,3-OH会优先被糖苷化[21]。本实验从纯化样品中鉴定出12 种花色苷见表2,结构见图3。
图2中峰1~4和峰8均有m/z 287的糖苷配基离子,表明它们是矢车菊素的糖苷衍生物。根据峰1的分子离子峰M+m/z 773.214 03和碎片离子峰m/z 611.161 27/449.104 09/287.054 29,峰1被鉴定为矢车菊素-3-二葡萄糖苷-5-葡萄糖苷。根据峰2的分子离子峰M+m/z 611.161 51和碎片离子峰m/z 449.112 51(损失m/z 162,葡萄糖)/287.055 91(损失m/z 324,2 分子葡萄糖),因此峰2被鉴定为矢车菊素-3,5-二葡萄糖苷,该物质已在西番莲花冠中被报道[22],但在果皮中鲜见报道。峰3(分子离子峰M+m/z 449.107 56、碎片离子峰m/z 287.054 20)被鉴定为矢车菊素-3-葡萄糖苷。峰4的分子离子峰M+m/z 595.166 40及其碎片离子峰m/z 287.059 20,其损失m/z 308对应于矢车菊素-3-芸香糖苷中芸香糖分子(鼠李糖+葡萄糖),因此峰4鉴定为矢车菊素-3-芸香糖苷。峰3、4所代表物质在西番莲果皮中已见报道[23]。峰8(分子离子峰M+m/z 535.107 50,碎片离子峰m/z 449.106 55/287.054 60)被鉴定为矢车菊素-3-(6”-丙二酰)葡萄糖苷,其在西番莲果皮[18,24]及花冠[22]中均有报道。
其次是建立声学模型。在所有的Kaldi的测试运行中,使用预定义培训脚本,这些脚本仅针对输入数据进行了调整。在测试运行中,在实验语料库中使用具有LDA+MLLT+SAT+fMLLR的GMM模型之上的DNN。
碎片离子峰m/z 271表明该物质的糖苷配基为天竺葵素(峰5和峰10)。根据峰5的分子离子峰M+m/z 433.112 50及碎片离子峰m/z 271.06 090(损失m/z 162,葡萄糖),被鉴定为天竺葵素-3-葡萄糖苷,其在紫果西番莲果皮中已有报道[18]。峰10具有2 个特征碎片离子峰,分别为m/z 433.112 60([M]+-146)和m/z 271.060 81([M]+-308),表明糖苷配基与芸香糖(鼠李糖+葡萄糖)连接。因此,峰10被鉴定为天竺葵素-3-芸香糖苷。
     
图3 紫果西番莲果皮中花色苷的化学结构
Fig. 3 Structures of anthocyanins in Passiflora edulis Sims peel

根据峰6和峰12的分子离子峰及碎片离子峰的特征信息,峰6和峰12分别被鉴定为飞燕草素-3-葡萄糖苷和飞燕草素-3-(6”-丙二酰)葡萄糖苷。峰7及峰9的碎片离子峰表明这两种物质均为芍药素苷(m/z 301)的衍生物。其中峰7的分子离子峰M+m/z 463.124 18,表明其由芍药素与一分子葡萄糖结合而成,所以峰7被鉴定为芍药素-3-葡萄糖苷,其在紫果西番莲果皮中已见报道[18]。峰9(分子离子峰M+m/z 549.124 21,碎片离子峰m/z 463.124 00/301.068 40)被鉴定为芍药素-3-(6”-丙二酰)葡萄糖苷。根据峰11的质谱特征信息,其被鉴定为锦葵色素-3-葡萄糖苷,在西番莲果皮中已见报道[19]。
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表2 紫果西番莲果皮花色苷的鉴定及质谱特征
Table 2 Identification and mass spectrometric properties of anthocyanins from Passi flora edulis Sims peel
     
峰号 保留时间/min 化学式 碎片离子峰(m/z)分子离子峰M+(m/z) δ 推断结构 参考文献1 5.948 C33H41O21 611.161 27 449.104 09 287.054 29 773.214 03 -0.27 矢车菊素-3-二葡萄糖苷-5-葡萄糖苷 [25]2 6.366 C27H31O16 449.112 51 287.055 91 611.161 51 0.49 矢车菊素-3,5-二葡萄糖苷 [25]3 7.267 C21H21O11 287.054 20 449.107 56 -1.85 矢车菊素-3-葡萄糖苷 [18,23,25]4 7.723 C27H31O15 287.059 20 595.166 40 0.17 矢车菊素-3-芸香糖苷 [18,26]5 8.602 C21H21O10 271.060 90 433.112 50 -0.92 天竺葵素-3-葡萄糖苷 [18]6 9.117 C21H21O12 303.050 00 465.103 04 -0.60 飞燕草素-3-葡萄糖苷 [27]7 9.487 C22H23O11 301.071 72 463.124 18 0.30 芍药素-3-葡萄糖苷 [18]8 10.356 C24H23O14 449.106 55 287.054 60 535.107 50 -2.80 矢车菊素-3-(6”-丙二酰)葡萄糖苷 [24,28]9 10.758 C25H25O14 463.124 00 301.068 40 549.124 21 -0.40 芍药素-3-(6”-丙二酰)葡萄糖苷 [29]10 11.514 C27H31O14 433.112 60 271.060 81 579.169 25 -2.73 天竺葵素-3-芸香糖苷 [18]11 14.839 C23H25O12 331.082 10 493.135 36 1.54 锦葵色素-3-葡萄糖苷 [19,26]12 15.617 C24H23O15 465.102 01 303.051 03 551.104 61 2.65 飞燕草素-3-(6”-丙二酰)葡萄糖苷 [30]

2.2 紫果西番莲果皮花色苷的体外抗氧化活性     
图4 紫果西番莲果皮花色苷和VC的DPP自由基(A)、ABTS阳离子自由基(B)清除活性和FRAP(C)
Fig. 4 Scavenging activities of anthocyanins from Passi flora edulis Sims peel and VC on 1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl radicals (A), 2,2’-azinobis(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid) cation radicals (B) and their ferric ion reducing antioxidant power (C)

由图4可以看出,在质量浓度为50~1 000 μg/mL时,紫果西番莲果皮花色苷粗提物、纯化样品和VC的DPPH自由基清除率均随质量浓度的增加而增加;质量浓度为1 000 μg/mL时,花色苷纯化样品的DPPH自由基清除率略高于VC、显著高于粗提物(P <0.05);花色苷纯化样品、VC和粗提物对DPPH自由基的IC50分别为126.6、152.2 μg/mL和604.1 μg/mL。ABTS阳离子自由基清除率的变化趋势与之类似,花色苷纯化样品、VC和粗提物的IC50分别为54.47、58.61 μg/mL和260.2 μg/mL。3 种花色苷样品的FRAP在质量浓度5~80 μg/mL范围内呈增加趋势;在80 μg/mL时,花色苷纯化样品FRAP显著高于VC和粗提物(P<0.05),此时FRAP分别为(1.413±0.051)、(1.277±0.025)mmol/mL和(0.724±0.021)mmol/mL。较高的抗氧化能力通常与花色苷及总酚的含量相关[31-32]。研究表明,覆盆子、蓝莓中的类黄酮化合物(如花色苷)具有优于VC的抗氧化能力[33],可能是由于花色苷的高抗氧化能力与其结构中含有大量酚羟基基团有关[21]。总体而言,本研究发现紫果西番莲果皮花色苷纯化样品的抗氧化能力较粗提物显著提高,且优于VC。
2.3 紫果西番莲果皮花色苷对α-淀粉酶及α-葡萄糖苷酶的抑制作用
表3 紫果西番莲果皮花色苷对α-淀粉酶和α-葡萄糖苷酶的抑制率
Table 3 Inhibition rates of crude extract and purified anthocyanins from Passi flora edulis Sims peel against α-amylase and α-glucosidase
     
α-葡萄糖苷酶活力抑制率/%粗提物 26.76±0.98a 52.87±2.31a纯化样品 34.11±1.47b 60.36±2.05b样品 α-淀粉酶活力抑制率/%

抑制与2型糖尿病相关的关键酶(α-淀粉酶和α-葡萄糖苷酶)活力能够减少脂肪吸收和防止餐后血糖升高,是治疗2型糖尿病的早期途径[34]。花色苷通过与这些酶结合,从而影响其活性。Peng Jinming等[35]发现,黑花生皮的花色苷提取物对α-淀粉酶和α-葡萄糖苷酶的抑制作用具有浓度依赖性,不同结构的花色苷与酶的结合能力存在差别。如表3所示,紫果西番莲果皮花色苷粗提物和纯化样品对α-淀粉酶活力抑制率分别为(26.76±0.98)%和(34.11±1.47)%,对α-葡萄糖苷酶活力抑制率分别为(52.87±2.31)%和(60.36±2.05)%,表现出更强的抑制作用。花色苷纯化样品对两种酶活力的抑制作用均显著高于粗提物(P<0.05)。
紫果西番莲果皮花色苷粗提物及纯化样品对α-淀粉酶和α-葡萄糖苷酶的抑制作用均不及阿卡波糖,然而,一些用于治疗肥胖和2型糖尿病的药物(奥利司他和阿卡波糖)易引发如胃肠胀气、腹泻和腹胀等不良反应,因此常规药物与具有生物功效的天然产物联用是减轻药物副作用的新途径[34]。另一方面,糖尿病人由于血糖升高,糖基化终末期产物和自由基明显增多,这些自由基会促进炎症反应发生,这也是糖尿病慢性病变的一个重要原因,因此抗氧化对于预防和延缓糖尿病的慢性并发症具有重要作用[36]。
紫果西番莲果皮花色苷纯化样品具有很好的抗氧化活性和抑制α-淀粉酶及α-葡萄糖苷酶的双重功效,因此在开发降血糖功能食品或药物方面具有极大潜力。
2.4 紫果西番莲果皮花色苷的体外生物利用度
表4 紫果西番莲果皮花色苷粗提物和纯化样品的生物利用度
Table 4 Bioavailability of crude extract and purified anthocyanins from Passi flora edulis Sims peel
     
注:同行小写字母不同表示差异显著(P<0.05)。
样品 粗提物 纯化样品生物利用度/% 5.45±0.39a 9.78±0.31b

生物利用度是指有效成分被吸收进入人体循环的比例,描述了口服物由胃肠道吸收以及经过肝脏到达体循环血液中的量占口服剂量的百分比。本实验采用体外模拟评价紫果西番莲果皮花色苷的生物利用度,从表4可以看出,花色苷纯化样品的生物利用度为(9.78±0.31)%,显著大于粗提物的(5.45±0.39)%(P <0.05)。研究表明,覆盆子花色苷粗提物在肠消化过程中的生物利用度为5.3%[37],与本研究粗提物体外模拟消化的生物利用度接近。由此可见,紫果西番莲果皮花色苷纯化样品具有更高的生物利用度。
3 结 论
基于保留时间和二级质谱数据,初步鉴定出紫果西番莲果皮中存在12 种花色苷。花色苷纯化样品的抗氧化活性显著高于粗提物(P<0.05),且优于VC,纯化样品对α-淀粉酶和α-葡萄糖苷酶抑制作用也显著高于粗提物(P<0.05),说明花色苷纯化样品具有很好的抗氧化活性和抑制血糖升高的潜能。花色苷粗提物和纯化样品的体外生物利用度分别为5.45%和9.78%,纯化样品具有更高的生物利用度。紫果西番莲果皮花色苷纯化样品在降血糖、抗氧化功能食品和医药方面具有很好的开发潜力。还需要运用核磁共振波谱等手段进一步解析紫果西番莲果皮花色苷的组成和结构,进而阐明结构与其强抗氧化性之间的关系,明确花色苷与纯化样品中其他成分可能存在的协同增效作用。
参考文献:
[1] LIU Meng, SU Yujie, LIN Yunliang, et al. Optimization of green extraction of anthocyanins from purple passion fruit peels by response surface methodology[J]. Journal of Food Processing and Preservation,2018, 42(10): e13756. DOI:10.1111/jfpp.13756.
[2] COELHO E M, GOMES R G, MACHADO B A S, et al. Passion fruit peel flour: technological properties and application in food products[J]. Food Hydrocolloids, 2017, 62: 158-164. DOI:10.1016/j.foodhyd.2016.07.027.
[3] 胡敏, 欧阳军, 胡蓉, 等. 紫果百香果外果皮中花青素的提取工艺及稳定性研究[J]. 江西农业大学学报, 2018, 40(4): 825-834.DOI:10.13836/j.jjau.2018104.
[4] 程明明, 黄苇. 西番莲果皮中膳食纤维的降脂保肝及润肠通便功能[J].食品科学, 2017, 38(11): 202-207. DOI:10.7506/spkx1002-6630-201711032.
[5] 文良娟, 毛慧君, 张元春, 等. 西番莲果皮成分分析及其抗氧化活性的研究[J]. 食品科学, 2008, 29(11): 54-58.
[6] COOPER-DRIVER G A. Contributions of Jeffrey Harborne and coworkers to the study of anthocyanins[J]. Phytochemistry, 2001, 56(3):229-236. DOI:10.1016/S0031-9422(00)00455-6.
[7] ASSAR M E, ANGULO J, RODRÍGUEZ-MAÑAS L. Diabetes and ageing-induced vascular inflammation[J]. The Journal of Physiology,2016, 594(8): 2125-2146. DOI:10.1113/JP270841.
[8] SANCHO R A S, PASTORE G M. Evaluation of the effects of anthocyanins in type 2 diabetes[J]. Food Research International, 2012,46(1): 378-386. DOI:10.1016/j.foodres.2011.11.021.
[9] PENG Yujia, YAN Yamei, WANG Peng, et al. Gut microbiota modulation and anti-inflammatory properties of anthocyanins from the fruits of Lycium ruthenicum Murray in dextran sodium sulfate-induced colitis in mice[J]. Free Radical Biology and Medicine, 2019, 136:96-108. DOI:10.1016/j.freeradbiomed.2019.04.005.
[10] GOWD V, JIA Zhenquan, CHEN Wei. Anthocyanins as promising molecules and dietary bioactive components against diabetes: a review of recent advances[J]. Trends in Food Science & Technology, 2017,68: 1-13. DOI:10.1016/j.tifs.2017.07.015.
[11] 王二雷, 陈晶晶, 刘彦君, 等. 基于组合色谱技术的蓝莓果实中花色苷元制备[J]. 食品科学, 2018, 39(18): 227-234. DOI:10.7506/spkx1002-6630-201818035.
[12] BRAND-WILLIAMS W, CUVELIER M E, BERSET C. Use of a free radical method to evaluate antioxidant activity[J]. LWT- Food Science and Technology, 1995, 28(1): 25-30. DOI:10.1016/S0023-6438(95)80008-5.
[13] RE R, PELLEGRINI N A, PANNALA A, et al. Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay[J].Free Radical Biology and Medicin, 1999, 26(9/10): 1231-1237.DOI:10.1016/S0891-5849(98)00315-3.
[14] SARKAR R, KUNDU A, BANERJEE K, et al. Anthocyanin composition and potential bioactivity of karonda (Carissa carandas L.)fruit: an Indian source of biocolorant[J]. LWT- Food Science and Technology, 2018, 93: 673-678. DOI:10.1016/j.lwt.2018.04.012.
[15] 李萌萌, 吕长鑫, 芦宇, 等. 纤维素酶辅助提取红树莓籽黄酮及其对α-葡萄糖苷酶和α-淀粉酶的抑制作用[J]. 中国食品学报, 2017,17(11): 99-107. DOI:10.16429/j.1009-7848.2017.11.013.
[16] MOJICA L, MEYER A, BERHOW M A, et al. Bean cultivars(Phaseolus vulgaris L.) have similar high antioxidant capacity, in vitro inhibition of α-amylase and α-glucosidase while diverse phenolic composition and concentration[J]. Food Research International, 2015,69: 38-48. DOI:10.1016/j.foodres.2014.12.007.
[17] SENGULH, SUREK E, NILUF-ERERDIL D, et al. Investigating the effects of food matrix and food components on bioaccessibility of pomegranate (Punica granatum) phenolics and anthocyanins using an in-vitro gastrointestinal digestion model[J]. Food Research International, 2014, 62(8): 1069-1079. DOI:10.1016/j.foodres.2014.05.055.
[18] 祝慧. 百香果的花色苷组分和哈尔滨红肠多肽组分的研究[D].苏州: 苏州大学, 2015: 21-29.
[19] 彭彬. 西番莲果皮色素提取分离及其结构的研究[D]. 福州: 福建农林大学, 2012: 41-57.
[20] RUSSELL D H, EDMONDSON R D. High-resolution mass spectrometry and accurate mass measurements with emphasis on the characterization of peptides and proteins by matrix-assisted laser desorption/ionization time-of-flight mass spectrometry[J]. Journal of Mass Spectrometry, 1997, 32(3): 263-276. DOI:10.1002/(sici)1096-9888(199703)32:3<263::aid-jms501>3.0.co;2-1.
[21] 张欣珂, 赵旭, 成池芳, 等. 葡萄酒中的酚类物质I: 种类、结构及其检测方法研究进展[J]. 食品科学, 2019, 40(15): 255-268.DOI:10.7506/spkx1002-6630-20180916-159.
[22] AIZZA L C B, SAWAYA A C H F, DORNELAS M C. Identification of anthocyanins in the corona of two species of Passiflora and their hybrid by ultra-high performance chromatography with electrospray ionization tandem mass spectrometry (UHPLC-ESI-MS/MS)[J].Biochemical Systematics and Ecology, 2019, 85: 60-67. DOI:10.1016/j.bse.2019.05.003.
[23] ABAD GARCÍA B, GARMÓN LOBATO S, BERRUETA L A,et al. Practical guidelines for characterization of O-diglycosyl flavonoid isomers by triple quadrupole MS and their applications for identification of some fruit juices flavonoids[J]. Journal of Mass Spectrometry, 2009, 44(7): 1017-1025. DOI:10.1002/jms.1573.
[24] KIDØY L, NYGARD A M, ANDERSEN Ø M, et al. Anthocyanins in fruits of Passiflora edulis and P. suberosa[J]. Journal of Food Composition and Analysis, 1997, 10(1): 49-54. DOI:10.1006/jfca.1996.0514.
[25] FENG Chengyong, SU Shang, WANG Lijin, et al. Antioxidant capacities and anthocyanin characteristics of the black-red wild berries obtained in northeast China[J]. Food Chemistry, 2016, 204: 150-158.DOI:10.1016/j.foodchem.2016.02.122.
[26] WU X, PRIOR R L. Systematic identification and characterization of anthocyanins by HPLC-ESI-MS/MS in common foods in the United States: fruits and berries[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2005, 53(7): 2589-2599. DOI:10.1021/jf048068b.
[27] RAMIREZ J E, ZAMBRANO R, SEPÚLVEDA B, et al. Anthocyanins and antioxidant capacities of six chilean berries by HPLC-HR-ESITOF-MS[J]. Food Chemistry, 2015, 176: 106-114. DOI:10.1016/j.foodchem.2014.12.039.
[28] ZHAO Zhenggang, YAN Huaifeng, ZHENG Rui, et al. Anthocyanins characterization and antioxidant activities of sugarcane (Saccharum officinarum L.) rind extracts[J]. Industrial Crops & Products, 2018,113: 38-45. DOI:10.1016/j.indcrop.2018.01.015.
[29] DIA V P, WANG Z, WEST M, et al. Processing method and corn cultivar affected anthocyanin concentration from dried distillers grains with solubles[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2015,63(12): 3205-3218. DOI:10.1021/acs.jafc.5b00128.
[30] HILLEBRAN S, SCHWARZ M L, PETER W. Characterization of anthocyanins and pyranoanthocyanins from blood orange (Citrus sinensis (L.) Osbeck) juice[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2004, 52(24): 7331-7338. DOI:10.1021/jf0487957.
[31] APAK R, GUCLU K, DEMIRATA B, et al. Comparative evaluation of various total antioxidant capacity assays applied to phenolic compounds with the CUPRAC assay[J]. Molecules, 2007, 12(7): 1496-1547. DOI:10.3390/12071496.
[32] 宛美志, 孟宪军. 蔓越莓花色苷的组成鉴定及抗氧化能力[J]. 食品科学, 2018, 39(22): 45-50. DOI:10.7506/spkx1002-6630-201822008
[33] PRIOR R L, CAO Guohua, MARTIN A, et al. Antioxidant capacity as influenced by total phenolic and anthocyanin content, maturity,and variety of Vaccinium species[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 1998, 46(7): 2686-2693. DOI:10.1021/jf980145d.
[34] OBOH G, OGUNSUYI O B, OGUNBADEJO M D, et al. Influence of gallic acid on α-amylase and α-glucosidase inhibitory properties of acarbose[J]. Journal of Food & Drug Analysis, 2016, 24(3): 627-634.DOI:10.1016/j.jfda.2016.03.003.
[35] PENG Jin Ming, JIA Yan, DU Xia, et al. Study of physicochemical stability of anthocyanin extracts from black peanut skin and their digestion enzyme and adipogenesis inhibitory activities[J]. LWT-Food Science and Technology, 2019, 107: 107-116. DOI:10.1016/j.lwt.2019.03.016.
[36] WANG C J, WANG Jinming, LIN W L, et al. Protective effect of Hibiscus anthocyanins against tert-butyl hydroperoxide-induced hepatic toxicity in rats[J]. Food & Chemical Toxicology an International Journal Published for the British Industrial Biological Research Association, 2000,38(5): 411-416. DOI:10.1016/S0278-6915(00)00011-9.
[37] MCDOUGALL G J, DOBSON P, SMITH P, et al. Assessing potential bioavailability of raspberry anthocyanins using an in vitro digestion system[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2005, 53(15):5896-5904. DOI:10.1021/jf050131p.

Identification and Bioactivity Evaluation of Anthocyanins from Passiflora edulis Sims Peel
HE Dan1, KONG Yuting1, SONG Hongbo1,2,*, AN Fengping1, HUANG Qun1,2
(1. College of Food Science, Fujian Agriculture and Forestry University, Fuzhou 350002, China; 2. Fujian Provincial Key Laboratory of Quality Science and Processing Technology in Special Starch, Fujian Agriculture and Forestry University, Fuzhou 350002, China)
Abstract: To develop and utilize anthocyanins in purple passion fruit peel (Passiflora edulis Sims cv. Zixiang 1), anthocyanins were extracted and identified from purple passion fruit peel. The antioxidant activity of the crude extract and the purified anthocyanins and their inhibitory ability against type 2 diabetes-related enzymes were evaluated. Their in vitro bioavailability was also investigated. The results showed that the total anthocyanin content in the purified sample was (122.31 ± 1.31) mg/g. A total of 12 anthocyanins were identified, and six anthocyanins. In terms of antioxidant capacity, inhibitory effect on α-amylase and α-glucosidase and in vitro bioavailability, the purified anthocyanins were significantly superior to the crude extract.
Keywords: Passiflora edulis Sims; peel; anthocyanins; identification; antioxidant

收稿日期:2019-07-15
基金项目:福建省科技重大专项(2018NZ0003-1);福建农林大学科技创新专项(CXZX2018059)
第一作者简介:何丹(1995—)(ORCID: 0000-0002-4222-1296),男,硕士研究生,研究方向为农产品加工及贮藏工程。E-mail: hedan001fafu@163.com
*通信作者简介:宋洪波(1966—)(ORCID: 0000-0002-3168-3065),男,教授,博士研究生,研究方向为食品科学与工程。E-mail: sghgbode@163.com
DOI:10.7506/spkx1002-6630-20190715-208
中图分类号:TS255.1
文献标志码:A
文章编号:1002-6630(2020)11-0057-07
引文格式:何丹, 孔钰婷, 宋洪波, 等. 紫果西番莲果皮花色苷鉴定及其生物活性[J]. 食品科学, 2020, 41(11): 57-63. DOI:10.7506/spkx1002-6630-20190715-208. http://www.spkx.net.cn
HE Dan, KONG Yuting, SONG Hongbo, et al. Identification and bioactivity evaluation of anthocyanins from Passiflora edulis Sims peel[J]. Food Science, 2020, 41(11): 57-63. (in Chinese with English abstract) DOI:10.7506/spkx1002-6630-20190715-208. http://www.spkx.net.cn
荷兰猪是豚鼠的别称,这些可爱的小家伙是很多人都喜欢的宠物。不过在瑞士,如果你只买一只荷兰猪当作宠物,就会触犯当地的法律。瑞士法律规定,人们必须满足一些动物的“社交权利”,而荷兰猪作为有社群行为的动物,自然成了这项法律的保护对象。
随着新课标的提出,传统的教学已经不适合高中生物课堂教学的需要。传统的教学重在知识的教习,忽略了学生能力的培养,这样的教学效果不佳。多媒体的出现使得高中生物课堂教学摆脱了传统的教学。以多媒体为手段,可以创设与教学内容相符的教学环境,进而帮助学生高效学习,激发学生的学习兴趣,提高课堂教学实效。




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