鼠李糖乳杆菌对大鼠黄曲霉毒素B1促排效果的评价鼠李糖乳杆菌对大鼠黄曲霉毒素B1促排效果的评价 张居典1,刘亚文1,王喜泉2,徐珒昭1,徐境含1,武明月1,许晓曦1,* (1.东北农业大学食品学院,黑龙江 哈尔滨 150030;2.黑龙江省绿色食品科学研究院,黑龙江 哈尔滨 150028) 摘要:通过对连续低剂量摄入黄曲霉毒素B1(aflatoxin B1,AFB1)的大鼠每日补充不同处理方式及不同菌体浓度的鼠李糖乳杆菌(Lactobacillus rhamnosu),并根据大鼠血清生化及免疫等指标,确定鼠李糖乳杆菌降低大鼠体内AFB1的能力及效果。大鼠(空白组除外)给予含50 μg/kg AFB1的饲料,并分别灌胃0.5 mL不同处理方式及不同菌体浓度的鼠李糖乳杆菌菌液。以大鼠体质量、血清细胞免疫因子、免疫球蛋白(immunoglobulin,Ig)等指标进行对比,探讨不同处理方式、不同菌体浓度的鼠李糖乳杆菌对大鼠生长状况及免疫调节作用的影响。结果表明:高剂量鼠李糖乳杆菌活菌对大鼠体内AFB1的吸附能力随菌体浓度变化差异较明显,高剂量活菌维持大鼠健康状况、肝功能和免疫功能稳定的效果最佳;灭活鼠李糖乳杆菌对大鼠体内AFB1有一定的吸附能力,在维持天冬氨酸转氨酶活力以及IgM、IgG质量浓度等指标稳定方面效果显著,但对细胞免疫因子效果不明显;低剂量鼠李糖乳杆菌发酵液对大鼠体内AFB1的吸附效果较差,仅高剂量发酵液有一定的吸附作用。 关键词:鼠李糖乳杆菌;黄曲霉毒素B1;吸附;免疫系统 黄曲霉毒素(aflatoxin,AFT)主要由黄曲霉(Aspergillus flavus)和寄生曲霉(Aspergillus parasiticus)产生,是一类化学结构类似的二氢呋喃香豆素类衍生物[1-2]。AFT共有20多种结构,最主要的4 种类型为AFB1、AFB2、AFG1和AFG2[3],其中AFB1的致畸、致癌、致突变性及降低机体免疫功能的毒性最强,是诱发肝癌的主要原因之一[4-5],其致癌作用是由肝脏细胞色素P450酶系经过代谢产生AFB1-8,9-环氧化物导致[6-7],对人体肝脏、肾脏等器官具有极强的损害作用。AFB1广泛存在于玉米、花生和大豆等农作物中,因此人体在日常饮食中与AFT的接触很难避免,且长期低剂量摄入会对人体产生不良的影响[8]。当人体长期摄入低剂量AFB1时,AFB1会强烈抑制人体的免疫功能从而降低人体免疫力[9-10]。 目前对AFB1能起到有效控制的方法主要有物理法、化学法和生物降解法。物理法(如加热、辐射和等离子降解[11-12])虽方便高效,但成本较高;化学法(如臭氧、过氧化氢和酸处理)虽成本低,却容易造成二次污染[13-15];生物降解法虽稳定性差,却几乎无任何副作用,因此近年来研究的重点转移到微生物降解AFB1方面[16-18]。鼠李糖乳杆菌(Lactobacillus rhamnosu)是革兰氏阳性菌,也是目前研究最深入的益生菌之一[19],市场上已经有许多与鼠李糖乳杆菌相关的成型产品,具有调节肠道微生态、抑制癌症和降低胆固醇等功效[20]。 已有体外研究表明,鼠李糖乳杆菌对AFB1具有较强的吸附能力,能够降低饲料或农作物中AFB1的含量,尤其是对鼠李糖乳杆菌进行酸处理或热处理后吸附效果更佳[21-22]。目前,一些体内实验结果表明,鼠李糖乳杆菌可吸附动物体内的AFB1,结合后一起排出体外。但目前,体内实验大多采用先通过灌胃高剂量AFB1对动物造成急性肝损伤或免疫缺陷,再给予鼠李糖乳杆菌对已患病动物进行治疗,但这种模型建立的方式与日常人体AFB1暴露的方式不同。因此,本实验为达到模拟鼠李糖乳杆菌吸附人体内AFB1的目的,采用对大鼠连续给予低剂量AFB1,并每日补充不同处理方式、不同菌体浓度的鼠李糖乳杆菌菌液的方法,通过测定大鼠血清生化及免疫等指标,确定鼠李糖乳杆菌降低动物体内AFB1的作用程度及效果。 明前茶的杯子里,叶片渐渐沉入水底,那种浅薄的绿色,并不像它的蓝眼睛一样高贵而优雅。它发现自己再没有出现在他的眼睛里,那杯可恶的明前茶就放在他的左手边。 1 材料与方法1.1 材料与试剂4 周龄SPF级雄性SD大鼠(体质量90~110 g,生产许可证号:SCXK(京)2016-0006) 北京维通利华实验动物技术有限公司。 AFB1 北京华安麦科生物技术有限公司;鼠李糖乳杆菌由东北农业大学乳品科学教育部重点实验室提供;二甲基亚砜 美国Sigma公司;磷酸盐缓冲液美国HyClone公司;免疫球蛋白(immunoglobulin,Ig)(IgA、IgG、IgM)质量浓度检测试剂盒 南京建成生物工程研究所有限公司;白细胞介素(interleukin,IL)-2、IL-4、肿瘤坏死因子α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)酶联免疫吸附测定试剂盒 上海江莱生物科技有限公司。 1.2 仪器与设备ACS30型电子秤 浙江风华科技有限公司;HH-4数显恒温水浴锅 常州丹瑞实验仪器设备有限公司;DHP-9162电热恒温培养箱 上海一恒科技有限公司;MHBS-1096A酶标仪 南京德铁实验设备有限公司;3K15高速冷冻离心机 德国Sigma公司;755B紫外-可见分光光度计 上海精密仪器公司;DSX-280B高压灭菌锅 上海申安公司;Cobas-c501自动生化分析仪瑞士罗氏公司。 1.3 方法1.3.1 鼠李糖乳杆菌培养 将鼠李糖乳杆菌接种到MRS液体培养基中,于37 ℃培养18 h并连续活化3 次后,3 000 r/min离心10 min,收集上清液及菌体,所得上清液即为鼠李糖乳杆菌发酵液。将菌体中加入生理盐水洗涤3 次后,用生理盐水重悬并按实验设计方法调整菌体浓度,即为鼠李糖乳杆菌活菌液。取鼠李糖乳杆菌活菌液用高压灭菌锅于121 ℃灭菌15 min,再用生理盐水重悬并调整菌体浓度,即为热灭活鼠李糖乳杆菌液。需确保实验中制得的灭活菌样品涂布于MRS固体培养基中于37 ℃培养48 h后无菌落产生。 江苏女作家李洁冰的《苏北女人》是一部约三十万字的绵密厚重的小说。江苏凤凰文艺出版社在内容简介里称这部小说在现代化碾压农耕文明的进程中“演绎出一部中国当代现实版的乡村农事诗”[1]。“现代化进程对农耕文明的碾压”这个世界文学母题,在二十世纪九十年代已经成为中国文学绕不过的叙事场域,伴随着乡村陷落的社会现代化进程,在中国已经成为不可抗拒的事实。与西方作家一样,中国当代乡村书写也普遍基于现代性立场抵抗这一现实。值得追问的是:抵抗什么?为什么抵抗?在什么层面上抵抗?抵抗的资源和灵感从哪里来?对这些问题的思考,有助于推进中国当代文学乡村书写的现代性建构,引领作家参与中国现实语境的文化互动。 其中值得强调的就是限额采伐以及科学经营,这是国内相关法律规定的重要制度,同时也是对森林资源进行控制的关键性措施。在以往的多年以来国内的森林资源已经是得到了严格的控制,整体上呈现出非常好的态势,但是国内依旧是在林木资源上比较缺乏的,这方面的管理还是需要进一步强化。 1.3.2 实验动物饲养管理及分组 如表2所示,综合工况后的计算结果包括冷态(SUS)和热态(OPE)。其中还有对模型的一次应力与二次应力的校核,只有当一次应力与二次应力同时校核成功才能说明模型所呈现的LNG气化站是可以安全生产的。从图3可以看到,对模型的二次应力校核结果显示为红色,说明二次应力校核未通过,其结果如表3所列。 将大鼠饲养在明暗交替、温度(23±2)℃、相对湿度(32±2)%的标准环境中,自由获取食物和水。所有动物实验均符合东北农业大学实验动物中心的标准及规定。 将大鼠在实验环境下适应5 d,适应期间饲喂基础饲料,自由进水。适应期结束后,将150 只大鼠随机分为10 组,每组15 只,并保证各组间大鼠体质量均无显著差异(P>0.05):空白组;AFB1对照组;鼠李糖乳杆活菌高、中、低剂量组;热灭活鼠李糖乳杆菌高、中、低剂量组;鼠李糖乳杆菌发酵液高、低剂量组。空白组大鼠饲喂正常饲料,每日灌胃0.5 mL生理盐水。除空白组外,其余各组大鼠均饲喂添加50 μg/kg AFB1的饲料;AFB1对照组每日灌胃0.5 mL生理盐水,鼠李糖乳杆菌活菌高、中、低剂量组每日分别灌胃0.5 mL菌体浓度为1010、109、108 CFU/mL的鼠李糖乳杆菌悬液。灭活鼠李糖乳杆菌高、中、低剂量组每日分别灌胃0.5 mL菌体浓度为1010、109、108 CFU/mL的灭活鼠李糖乳杆菌悬液。鼠李糖乳杆菌发酵液高、低剂量组每日分别灌胃0.5 mL菌体浓度为109、108 CFU/mL的鼠李糖乳杆菌发酵上清液。连续灌胃4 周,每次取样实验前1 d对大鼠禁食,分别于饲喂第0、7、14、28天记录大鼠体质量,并在每个重复中随机取4~5 个发育正常的大鼠个体,麻醉后心脏取血,记录肝、肾等内脏质量,按下式计算脏器指数。
1.3.3 血清肝功能生化指标的测定 于饲喂第0、7、14、28天每次随机取4~5 只大鼠空腹称体质量,经乙醚麻醉后心脏取血3 mL,放入4 ℃冰箱中静置12 h,4 ℃、3 000 r/min离心10 min,收集血清。将制备好的血清用Cobas-c501自动生化分析仪检测血清天冬氨酸转氨酶(aspartate aminotransferase,AST)和谷丙转氨酶(alanine aminotransferase,ALT)活力。 1.3.4 大鼠血清免疫因子质量浓度的测定 按1.3.3节方法制备血清,将血清于-20 ℃冰箱保存。取保存的血清,解冻后按照试剂盒说明书测定大鼠细胞因子IL-2、IL-4、TNF-α、IgA、IgG、IgM质量浓度。 1.4 数据处理与分析实验数据均使用Statistix 8软件进行统计分析;组间显著性差异分析采用单因素方差分析,P<0.05认为差异有统计学意义;用Origin 8.5软件作图;结果以平均值±标准差表示。 2 结果与分析2.1 鼠李糖乳杆菌对连续低剂量摄入AFB1大鼠体质量的影响表 1 不同处理方式鼠李糖乳杆菌对连续低剂量摄入AFB1大鼠体质量的影响
Table 1 Effects of Lactobacillus rhamnosus and its cell-free culture supernatant on body mass of rats with continuous low dose AFB1 intake g 注:同列肩标小写字母不同表示差异显著(P<0.05)。表3同。 组别 第0天 第7天 第14天 第28天空白组 156.00±5.72a 223.45±9.59a 285.38±17.19a 332.67±5.51a AFB1对照组 153.91±5.52a 176.58±11.49f 230.33±12.78d 276.67±3.51de活菌低剂量组 151.83±5.81a 182.73±5.55def 242.11±9.75cd 273.60±14.84e活菌中剂量组 150.67±7.39a 190.25±9.51cdef 250.29±5.44bcd 290.20±5.50bcde活菌高剂量组 152.91±6.11a 208.08±7.66b 268.78±9.61ab 305.60±9.74abc灭活菌低剂量组 155.33±6.53a 190.67±10.98cde 241.89±14.18cd 278.20±14.04de灭活菌中剂量组 151.00±11.51a 195.17±8.65bcd 255.67±22.19bc 311.00±12.15ab灭活菌高剂量组 159.91±5.45a 191.50±12.96cde 260.88±12.01bc 314.50±7.51ab发酵液低剂量组 157.17±8.36a 179.83±13.80ef 243.67±14.69d 286.67±16.60cde发酵液高剂量组 152.00±6.51a 200.33±9.94bc 253.43±7.72bc 299.40±8.53bcd
大鼠体质量是直接反映大鼠生长性能的指标,同时可以间接反映大鼠其他生理机能是否正常。鼠李糖乳杆菌对连续低剂量摄入AFB1大鼠体质量的影响如表1所示。实验开始前各组大鼠体质量无显著差异(P>0.05)。饲喂1 周后,活菌高剂量组,灭活菌高、中、低剂量组以及发酵液高剂量组大鼠体质量与AFB1对照组差异显著(P<0.05),表明鼠李糖乳杆菌具有干预效果,但与空白组相比仍有显著差异(P<0.05)。饲喂2 周后,活菌高剂量组大鼠体质量与空白组无显著性差异(P>0.05),预防大鼠体质量下降的效果最为突出。饲养4 周后,除活菌高剂量组外,灭活菌高、中剂量组大鼠体质量也与空白组大鼠体质量无显著差异(P>0.05)。 以上结果表明,处理方式及剂量对鼠李糖乳杆菌维持大鼠体质量正常具有显著影响。高剂量的鼠李糖乳杆菌活菌对维持大鼠体质量正常的作用效果最快,饲喂2 周时即出现明显干预作用,中、低剂量的鼠李糖乳杆菌活菌在饲喂4 周时仍无显著效果。灭活鼠李糖乳杆菌在饲喂4 周时对维持大鼠体质量正常有明显效果,较活菌作用时间相对较慢,但高、中剂量均可维持大鼠体质量正常,对鼠李糖乳杆菌浓度需求较低。 2.2 鼠李糖乳杆菌对连续低剂量摄入AFB1大鼠脏器指数的影响表 2 不同处理方式鼠李糖乳杆菌对连续低剂量摄入AFB1大鼠脏器指数的影响
Table 2 Effects of Lactobacillus rhamnosus and its cell-free culture supernatant on visceral organ indexes of rats with continuous low-dose AFB1 intake 注:#.与空白组比较差异显著(P<0.05);*.与AFB1对照组比较差异显著(P<0.05)。 组别 肝脏指数/% 肾脏指数/% 脾脏指数/%空白组 3.61±0.11* 0.74±0.03* 0.22±0.02 AFB1对照组 5.21±0.43# 0.99±0.03# 0.25±0.02活菌低剂量组 5.16±0.14# 0.86±0.05 0.25±0.03活菌中剂量组 4.62±0.19# 0.87±0.04 0.27±0.04活菌高剂量组 4.07±0.17* 0.78±0.01* 0.20±0.02灭活菌低剂量组 4.78±0.10# 0.86±0.06 0.26±0.03灭活菌中剂量组 4.44±0.44# 0.86±0.06 0.21±0.03灭活菌高剂量组 4.12±0.28* 0.81±0.07* 0.22±0.04发酵液低剂量组 4.75±0.46# 0.90±0.05 0.26±0.01发酵液高剂量组 4.15±0.09* 0.80±0.07* 0.20±0.02
脏器指数是指内脏鲜质量与大鼠体质量的比值,是初步反映大鼠健康情况的指标[23]。由于AFB1有强烈的致癌及降低免疫功能的作用,因此,主要会引起肝脏、肾脏及脾脏的损伤。由表2可知,各组大鼠的脾脏指数无显著差异(P>0.05),而肝脏指数和肾脏指数差异显著(P<0.05)。AFB1对照组大鼠中肝脏指数和肾脏指数较空白组均显著升高(P<0.05),分别增加了44.32%和33.78%。这是由于AFB1造成大鼠肝脏及肾脏损伤,同时出现不同程度肿大。与AFB1对照组相比,活菌、灭活菌和发酵液高剂量组大鼠肝脏指数和肾脏指数均显著降低(P<0.05),肝脏指数分别降低了21.88%、20.92%、20.35%,肾脏指数分别降低了21.21%、18.18%、19.19%。以上结果表明,3 种处理方式的鼠李糖乳杆菌均可维持大鼠肝脏及肾脏指数稳定,但与鼠李糖乳杆菌剂量有关,鼠李糖乳杆菌菌体浓度越高,维持大鼠肝脏指数和肾脏指数稳定的效果越明显。 2.3 鼠李糖乳杆菌对连续低剂量摄入AFB1大鼠血清功能指标的影响 图 1 不同处理方式鼠李糖乳杆菌对连续低剂量摄入AFB1大鼠ALT(A)和AST(B)活力的影响
Fig. 1 Effects of Lactobacillus rhamnosus and its cell-free culture supernatant on ALT (A) and AST (B) activity in rats with continuous low-dose AFB1 intake
大鼠血清中ALT及AST活力是反映大鼠肝功能的重要指标,会在发生肝损伤时明显升高。如图1A所示,与空白组相比,饲喂28 d时,除活菌高剂量组外,其余各组大鼠血清ALT活力显著升高(P<0.05);与AFB1对照组相比,仅活菌及发酵液高剂量组大鼠ALT活力显著降低(P<0.05),且与空白组差异不显著(P>0.05),其中活菌高剂量组大鼠ALT活力降低的效果最为明显。如图1B所示,饲喂28 d时,各组大鼠AST活力的变化趋势与ALT类似。与AFB1对照组相比,除活菌与发酵液低剂量组外,其余各组大鼠ALT活力均显著降低(P<0.05),其中活菌中、高剂量组,灭活菌各剂量组及发酵液高剂量组的稳定效果较为明显,且与空白组差异不显著(P>0.05)。 不同处理方式、不同菌体浓度鼠李糖乳杆菌对大鼠血清ALT及AST活力有不同程度的影响。其中,高剂量的鼠李糖乳杆菌活菌和发酵液对ALT活力的降低效果显著(P<0.05),两组大鼠与空白组大鼠血清ALT活力接近,特别是活菌高剂量组。同样,中、高剂量的鼠李糖乳杆菌活菌,各剂量的灭活菌及高剂量的发酵液均对大鼠血清AST活力稳定产生显著效果(P<0.05);其中,高剂量的活菌和灭活菌稳定效果最明显。这与曾东等[24]采用同为革兰氏阳性菌的植物乳杆菌F22对AFB1中毒小鼠血清中ALT与AST活力的改善效果基本一致。崔燕等[25]采用高剂量AFB1诱导大鼠急性肝损伤模型,模型组大鼠AST及ALT活力均显著升高。 基于多模式辅助刺激的运动想象电位特征调 制 ………………………………… 李小芹,赵 丽,边 琰(26) 常见抗病毒治疗药物因为其药物代谢途径、毒副作用等特点,与很多其他种类药物产生药物相互作用。临床中要密切关注患者合并用药情况,并参考其他相关指南或药物说明书及时调整药物方案或调整药物剂量。 2.4 鼠李糖乳杆菌对连续低剂量摄入AFB1大鼠细胞免疫因子分泌的影响2.4.1 鼠李糖乳杆菌对大鼠血清IL-2质量浓度的影响 四是推动了社会治理结构优化和社会治理能力的提升。多元化纠纷解决机制是推动实现社会治理体系和社会治理能力现代化的重要内容。“一站式”司法确认机制,积极延伸司法机关审判职能,充分发挥人民调解组织的作用,联合地方各级党委、政府、相关部门和组织,建立起了衔接紧密、各方联动的矛盾纠纷化解机制,有效地将矛盾纠纷化解在源头,既提升了社会治理能力,又优化了社会治理结构。 在常规的预习中,学生往往只是通读课本,并不是带着问题去预习,也就失去了思考的意识。为此在预习方案的设计中,要注意引导学生改浏览型为思考型,使预习成为有意义预习。因此在预习方案中,可以把预习方案设计为知识回顾—问题引出—新课的自我论证—利用新知解决问题四个环节。通过知识回顾环节可以为学生的独立思考提供知识储备;在问题引入环节,通过问题的设计,可以让学生明白本节课学习那些内容,使学生带着思考去预习,逐步形成独立思考意识;在新课的自我论证及利用新知解决问的环节,可以提出一些浅显易懂的问题让学生能够利用以往的知识,通过自己的独立思考及初步总结能够完成,让学生获得成功的体验,提高学习的兴趣。 细胞因子是一类多功能蛋白质分子,主要由免疫细胞及其他参与免疫应答的细胞产生,包括IL、干扰素及TNF等,具有介导相关免疫应答、调节炎症、刺激造血功能及参与组织修复等功能[26]。IL-2的主要作用是调节T淋巴细胞增殖和迁移,是Th1细胞衍生的细胞因子,IL-2水平上升表明免疫应答向Th1方向移动[27]。 图 2 不同处理方式鼠李糖乳杆菌对连续低剂量摄入AFB1大鼠血清IL-2质量浓度的影响
Fig. 2 Effects of Lactobacillus rhamnosus and its cell-free culture supernatant on serum IL-2 in rats with continuous low dose AFB1 intake
由图2可知,饲喂28 d时大鼠血清中IL-2质量浓度存在差异。AFB1对照组大鼠血清IL-2质量浓度显著降低(P<0.05),说明AFB1对大鼠免疫功能有较强的抑制作用。给予鼠李糖乳杆菌后,各组大鼠血清IL-2质量浓度不同程度增大,活菌中、高剂量组和发酵液高剂量组大鼠血清IL2质量浓度与AFB1对照组差异显著(P<0.05),其中活菌和发酵液高剂量组与空白组差异不显著(P>0.05)。这表明鼠李糖乳杆菌对连续低剂量摄入AFB1大鼠血清IL-2质量浓度的稳定效果与处理方式及菌体浓度有关。低剂量活菌、各剂量灭活菌和低剂量发酵液均对大鼠血清IL-2质量浓度的降低无明显改善效果,给予中剂量活菌稍有改善,但与空白组相比仍有显著差异(P<0.05)。以上结果表明,高剂量的活菌和发酵液对连续低剂量摄入AFB1大鼠血清IL-2质量浓度降低情况的改善效果显著,接近空白组大鼠水平。 2.4.2 鼠李糖乳杆菌对大鼠血清IL-4质量浓度的影响 IL-4是一种功能性多样的细胞因子,在免疫调节中起到关键性作用,其调节免疫的机制极为复杂,不同靶器官类型调节作用不同[28]。Th0细胞在受到抗原刺激后分化为Th1和Th2两个细胞亚群,其中Th2主要分泌以IL-4为代表的细胞因子。由图3可知,饲喂28 d时,各组大鼠血清IL-4质量浓度存在差异。AFB1对照组大鼠血清IL-4质量浓度与空白组大鼠相比显著升高(P<0.05),升高了202.13%。与AFB1对照组相比,仅活菌高剂量组大鼠血清IL-4质量浓度显著降低(P<0.05),仅比空白组大鼠血清IL-4质量浓度上升了12.92%,效果最佳。 图 3 不同处理方式鼠李糖乳杆菌对连续低剂量摄入AFB1大鼠血清IL-4质量浓度的影响
Fig. 3 Effects of Lactobacillus rhamnosus and its cell-free culture supernatant on serum IL-4 in rats with continuous low dose AFB1 intake
大鼠血清IL-4水平异常表明大鼠血清免疫因子受到AFB1影响,而IL-4质量浓度的增加说明AFB1会使大鼠免疫向Th2方向移动,而给予鼠李糖乳杆菌后,各组大鼠血清IL-4水平出现不同程度的下降,表明不同处理方式、不同剂量的鼠李糖乳杆菌均具有维持血清IL-4水平稳定的能力,但除活菌高剂量组外,其余各组大鼠血清IL-4水平维持效果不显著。高剂量活菌维持连续摄入低剂量AFB1大鼠血清IL-4水平稳定的能力最佳,低剂量发酵液几乎无维持IL-4稳定的能力。 2.4.3 鼠李糖乳杆菌对大鼠血清TNF-α质量浓度的影响 图 4 不同处理方式鼠李糖乳杆菌对连续低剂量摄入AFB1大鼠血清TNF-α质量浓度的影响
Fig. 4 Effects of Lactobacillus rhamnosus and its cell-free culture supernatant on serum TNF-α in rats with continuous low-dose AFB1 intake
TNF-α主要由巨噬细胞以及某些T细胞分泌产生,TNF-α最主要的作用是直接杀伤肿瘤细胞,同时能够促进B淋巴细胞增殖,TNF-α的特异性受体普遍存在于许多重要的活性代谢组织,如脂肪组织、肝脏和骨骼肌细胞[29]。由图4可知,饲喂28 d时各组大鼠血清TNF-α质量浓度存在差异。AFB1对照组大鼠血清TNF-α质量浓度与空白组大鼠相比显著降低(P<0.05),降低了55.83%。与AFB1对照组相比,仅活菌和发酵液高剂量组大鼠血清TNF-α质量浓度显著升高(P<0.05)。实验结果表明,饲喂28 d时大鼠免疫功能受到AFB1影响,AFB1使大鼠血清TNF-α质量浓度明显降低。给予低剂量不同方式处理的鼠李糖乳杆菌均无法促使大鼠血清TNF-α质量浓度趋于正常,仅高剂量的活菌和发酵液维持连续低剂量摄入AFB1大鼠血清TNF-α质量浓度稳定的效果显著(P<0.05),其中,高剂量活菌效果最佳。 综上所述,长期摄入低剂量AFB1会对大鼠免疫功能产生抑制作用,其中血清IL-2、TNF-α质量浓度均显著降低(P<0.05),IL-4质量浓度显著升高(P<0.05)。随菌体浓度的变化鼠李糖乳杆菌活菌对大鼠免疫系统的影响差异较大;高剂量活菌维持大鼠免疫系统功能稳定的效果最佳,对实验中所测血清各项免疫因子均能发挥显著改善作用(P<0.05);中剂量活菌仅对血清IL-2质量浓度具有显著稳定作用(P<0.05),对其他免疫因子几乎无稳定作用,而低剂量活菌对所测血清各项免疫因子均无显著稳定作用(P>0.05)。灭活菌对免疫系统的稳定作用随菌体浓度变化差异较小,各剂量灭活菌维持大鼠免疫系统稳定的作用效果均不显著(P>0.05)。而Campagnollo等[30]研究发现,体外环境中冷冻干燥的鼠李糖乳杆菌与AFB1有较好的结合效果,这与本实验体内环境中的实验结果不同,因此灭活后的鼠李糖乳杆菌对AFB1抑制免疫功能的预防作用值得进一步讨论。高剂量发酵液对维持大鼠免疫系统稳定效果显著(P<0.05),而低剂量发酵液仅能够维持大鼠血清TNF-α水平稳定,对血清IL-2及IL-4水平均无显著作用(P>0.05)。 2.5 鼠李糖乳杆菌对连续低剂量摄入AFB1大鼠血清Ig质量浓度的影响Ig是介导体液免疫的主要抗体,血清抗体水平的高低在一定程度上反映了机体对疾病的抵抗能力。IgA、IgG、IgM水平是所有Ig中具有代表性的3 项指标,通常情况下,检测这3 项指标即可反映机体的免疫水平。IgA是动物机体抗感染的最初屏障,具有十分重要的作用[31];IgG是血清中含量最高的Ig,具有抗菌、抗病毒等作用,能够促进肿瘤细胞和效应细胞之间的连接,可以杀伤肿瘤细胞等靶细胞[32];IgM是血清中一种分子质量较大的Ig,有较强的杀菌、中和毒素和抗病毒等免疫功能。 由表3可知,饲喂28 d时,AFB1对照组大鼠血清IgA、IgG、IgM质量浓度与空白组相比均显著降低(P<0.05),分别降低了41.25%、66.27%、49.33%。活菌各剂量组与灭活菌中、高剂量组大鼠血清IgA质量浓度均与AFB1对照组大鼠差异显著(P<0.05),分别比AFB1对照组提高了47.65%、34.34%、28.74%、37.89%、29.62%;表明鼠李糖乳杆菌活菌及灭活菌对维持连续低剂量摄入AFB1大鼠血清IgA水平稳定有显著作用(P<0.05),且呈剂量依赖性,而鼠李糖乳杆菌发酵液对维持大鼠血清IgA水平稳定无显著作用。 朱俊玲《中国戏曲学院京剧经典剧目的传承与创新研究初探》[10]一文对中国戏曲学院对京剧经典剧目的传承与创新进行了简单总结:(1)基本保持原型,改动甚微的经典剧目;(2)融入新时代特色,改动较大的传统剧目;(3)贴近现代生活,完全新创的剧目。以上三类也是目前京剧剧目的创作现状。对于经典剧目与新创剧目,笔者就徐州民众对于京剧现代剧与传统剧的喜好进行了调查,有效问卷198份。其中有149位民众选择传统京剧,可见人们更偏爱经典故事。 表 3 不同处理方式鼠李糖乳杆菌对连续低剂量摄入AFB1大鼠Ig质量浓度的影响
Table 3 Effects of Lactobacillus rhamnosus and its cell-free culture supernatant on serum immunoglobulins in rats with continuous low-dose AFB1 intake 空白组 0.58±0.02a 26.9±3.76a 1.36±0.04a AFB1对照组 0.34±0.01d 9.07±1.54e 0.69±0.06c活菌低剂量组 0.44±0.02bc 14.54±0.20cde 0.69±0.08c活菌中剂量组 0.46±0.02bc 17.73±2.94bcd 0.73±0.13bc活菌高剂量组 0.51±0.04ab 22.81±0.22ab 1.25±0.27ab灭活菌低剂量组 0.37±0.04cd 12.80±0.54de 0.92±0.12abc灭活菌中剂量组 0.44±0.03bc 19.13±1.36bc 1.03±0.11abc灭活菌高剂量组 0.47±0.02b 24.04±0.76ab 1.22±0.01ab发酵液低剂量组 0.42±0.01bcd 15.10±1.87cde 0.69±0.00c发酵液高剂量组 0.42±0.03bcd 22.98±1.32ab 1.02±0.01abc
饲喂28 d时,与AFB1对照组相比,活菌和灭活菌中、高剂量组及发酵液高剂量组大鼠血清IgG质量浓度均显著升高(P<0.05);这表明鼠李糖乳杆菌活菌、灭活菌以及发酵液均有维持血清IgG水平稳定的效果,且菌体浓度越高,维持稳定的效果越好。 各组大鼠血清IgM水平变化与IgA类似,仅活菌和灭活菌高剂量组与AFB1对照组相比显著升高(P<0.05),分别升高了80.54%、76.22%,其余各组大鼠血清IgM水平均无显著提升(P>0.05)。鼠李糖乳杆菌发酵液对维持大鼠血清IgM水平稳定不能发挥显著作用。以上结果表明,仅高剂量的鼠李糖乳杆菌活菌及灭活菌对AFB1抑制免疫系统有显著改善作用。 3 结 论鼠李糖乳杆菌能够促进连续低剂量摄入AFB1大鼠血清生化及免疫功能指标趋于正常,且与鼠李糖乳杆菌处理方式及剂量有关。高剂量鼠李糖乳杆菌活菌对维持大鼠血清生化及免疫功能指标正常的效果最好且有效作用时间最快。鼠李糖乳杆菌能够维持大鼠血清生化及免疫功能正常的原因可能是鼠李糖乳杆菌能够吸附大鼠体内的AFB1,二者结合后促进AFB1与鼠李糖乳杆菌一起排出体外,但是目前更深入的结合机理需要后续进一步的研究与探讨。 参考文献: [1] LIU Yan, WU F. Global burden of aflatoxin-induced hepatocellular carcinoma: a risk assessment[J]. Environmental Health Perspectives,2010, 118(6): 818-824. DOI:10.1289/ehp.0901388. [2] 李冰. 黑曲霉对黄曲霉毒素B1的降解及应用[D]. 泰安: 山东农业大学, 2012: 3. DOI:10.7666/d.Y2303843. [3] MARTINA L, FRANCESCA F, VANIA L, et al. Mycotoxin biotransformation by native and commercial enzymes: present and future perspectives[J]. Toxins, 2017, 9(111): 1-23. DOI:10.3390/toxins9040111. [4] LIU Yan, CHANG C H, MARSH G M, et al. Population attributable risk of aflatoxin-related liver cancer: systematic review and metaanalysis[J]. European Journal of Cancer, 2012, 48(14): 2125-2136.DOI:10.1016/j.ejca.2012.02.009. [5] SU Hang, ZHAO Jing, XIONG Yujuan, et al. Large-scale analysis of the genetic and epigenetic alterations in hepatocellular carcinoma from Southeast China[J]. Mutation Research/Fundamental and Molecular Mechanisms of Mutagenesis, 2008, 641(1/2): 27-35. DOI:10.1016/j.mrfmmm.2008.02.005. [6] 罗自生, 秦雨, 徐艳群, 等. 黄曲霉毒素的生物合成、代谢和毒性研究进展[J]. 食品科学, 2015, 36(3): 250-257. DOI:10.7506/spkx1002-6630-201503048. [7] PRESTON R J, WILLIAMS G M. DNA-reactive carcinogens: mode of action and human cancer hazard[J]. CRC Critical Reviews in Toxicology, 2005, 35(8): 673-683. DOI:10.1080/10408440591007278. [8] MAHFOUZ M E, SHERIF A H. A multiparameter investigation into adverse effects of aflatoxin on Oreochromis niloticus health status[J]. The Journal of Basic & Applied Zoology, 2015, 71: 48-59.DOI:10.1016/j.jobaz.2015.04.008. [9] 吕武兴, 贺建华, 宋洪国, 等. 黄曲霉毒素B1对肉鸭生长、肝组织结构及免疫相关基因表达的影响[J]. 动物营养学报, 2013, 25(4):812-818. DOI:10.3969/j.issn.1006-267x.2013.04.019. [10] 汪凤媛. 日粮中添加亚硒酸钠对黄曲霉素B1中毒雏鸡肾脏影响的病理学研究[D]. 雅安: 四川农业大学, 2014: 34. [11] LIU Ruijie, WANG Ruiqi, LU Jian, et al. Degradation of AFB1 in aqueous medium by electron beam irradiation: kinetics, pathway and toxicology[J]. Food Control, 2016, 66: 151-157. DOI:10.1016/j.foodcont.2016.02.002. [12] ALAM S S, DENG Y. Protein interference on aflatoxin B1 adsorption by smectites in corn fermentation solution[J]. Applied Clay Science,2017, 144: 36-44. DOI:10.1016/j.clay.2017.04.024. [13] RASTEGAR H, SHOEIBI S, YAZDANPANAH H, et al. Removal of aflatoxin B1 by roasting with lemon juice and/or citric acid in contaminated pistachio nuts[J]. Food Control, 2017, 71: 279-284.DOI:10.1016/j.foodcont.2016.06.045. [14] MOON Y S, KIM H M, CHUN H S, et al. Organic acids suppress aflatoxin production via lowering expression of aflatoxin biosynthesisrelated genes in Aspergillus flavus[J]. Food Control, 2018, 88: 207-216. DOI:10.1016/j.foodcont.2018.01.017. [15] AIKO V, EDAMANA P, MEHTA A. Decomposition and detoxification of aflatoxin B1 by lactic acid[J]. Journal of the Science of Food and Agriculture, 2016, 96(6): 1959-1966. DOI:10.1002/jsfa.7304. [16] ESHELLI M, HARVEY L, EDRADA-EBEL R A, et al. Metabolomics of the bio-degradation process of aflatoxin B1 by actinomycetes at an initial pH of 6.0[J]. Toxins, 2015, 7(2): 439-456. DOI:10.3390/toxins7020439. [17] ADEBO O A, NJOBEH P B, MAVUMENGWANA V. Degradation and detoxification of AFB1 by Staphylocococcus warneri,Sporosarcina sp. and Lysinibacillus fusiformis[J]. Food Control, 2016,68: 92-96. DOI:10.1016/j.foodcont.2016.03.021. [18] ADEBO O A, NJOBEH P B, SIDU S, et al. Aflatoxin B1 degradation by liquid cultures and lysates of three bacterial strains[J]. International Journal of Food Microbiology, 2016, 233: 11-19. DOI:10.1016/j.ijfoodmicro.2016.06.007. [19] SINGH C K, GEORGE J, DUSTER M, et al. Abstract 235:Combination of the probiotic Lactobacillus rhamnosus GG with grape antioxidant resveratrol for the management of colorectal cancer[J].Cancer Research, 2014, 74(19): 235. DOI:10.1158/1538-7445.AM2014-235. [20] WANG Yuhua, LIU Yanlong, SIDHU A, et al. Lactobacillus rhamnosus GG culture supernatant ameliorates acute alcohol-induced intestinal permeability and liver injury[J]. American Journal of Physiology-Gastrointestinal and Liver Physiology, 2012, 303(1):32-41. DOI:10.1152/ajpgi.00024.2012. [21] HANI E N, MYKKANEN H, KANKAANPAA P, et al. Ability of a mixture of Lactobacillus and Propionibacterium to influence the faecal aflatoxin content in healthy Egyptian volunteers: a pilot clinical study[J]. Bioscience and Microflora, 2010, 19(1): 41-45.DOI:10.12938/bifidus1996.19.41. [22] KANKAANPÄÄ P, TUOMOLA E, ELNEZAMI H, et al. Binding of aflatoxin B1 alters the adhesion properties of Lactobacillus rhamnosus strain GG in a Caco-2 model[J]. Journal of Food Protection, 2000, 63(3): 412-414. DOI:10.1002/(SICI)1097-4660(200003)75:3<237::AID-JCTB189>3.0.CO;2-I. [23] 蒿艳蓉. 银杏叶提取物(EGb761)抑制黄曲霉毒素B1诱发大鼠肝癌过程中的作用及其机制[D]. 南宁: 广西医科大学, 2008: 50-51. [24] 曾东, 唐雨蕊, 倪学勤, 等.植物乳杆菌F22对黄曲霉毒素B1的吸附特性[J]. 食品科学, 2009, 30(23): 365-369. [25] 崔燕, 凌建刚, 姚卫蓉, 等. 库拉索芦荟对黄曲霉毒素B1致大鼠急性肝损伤的保护作用[J]. 食品科学, 2016, 37(7): 175-181.DOI:10.7506/spkx1002-6630-201607032. [26] 路则庆, 羊雪芹, 靳明亮, 等. 细菌蛋白多糖对大鼠免疫功能的影响[J].动物营养学报, 2010, 22(5): 1350-1354. DOI:10.3969/j.issn.1006-267x.2010.05.033. [27] 郑建华. 白介素-2研究进展[J]. 海峡药学, 2006, 18(3): 1-3.DOI:10.3969/j.issn.1006-3765.2006.03.001. [28] 刘瑜, 赵宏霞, 曹敏, 等. 哮喘患儿血清白细胞介素-4、白细胞介素-17和干扰素-γ水平的检测[J]. 中国实验诊断学, 2013, 17(4): 735-737. DOI:10.3969/j.issn.1007-4287.2013.04.045. [29] LYDYARD P, WHELAN A, FANGER M. BIOS instant notes in immunology[M]. London: Taylor & Francis, 2011: 68.DOI:10.4324/9780203808306. [30] CAMPAGNOLLO F B, FRANCO L T, ROSIM R E, et al. The ability of Lactobacillus rhamnosus in solution, spray-dried or lyophilized to bind aflatoxin B1[J]. Journal of Food Research, 2014, 3(2): 35.DOI:10.5539/jfr.v3n2p35. [31] 王永胜, 王艳青, 马立保, 等. 酪蛋白磷酸肽(CPPs)对肉仔鸡免疫功能的影响[J]. 饲料工业, 2007, 28(11): 9-11. DOI:10.3969/j.issn.1001-991X.2007.11.003. [32] ZHANG Bingzhao, INNGJERDINGEN K T, ZOU Yuanfeng,et al. Characterisation and immunomodulating activities of exopolysaccharides from submerged cultivation of Hypsizigus marmoreus[J]. Food Chemistry, 2014, 163: 120-128. DOI:10.1016/j.foodchem.2014.04.092.
Evaluation of the Effect of Lactobacillus rhamnosus on Promoting the Excretion of Aflatoxin B1 in Rats ZHANG Judian1, LIU Yawen1, WANG Xiquan2, XU Jinzhao1, XU Jinghan1, WU Mingyue1, XU Xiaoxi1,*
(1. School of Food Science, Northeast Agricultural University, Harbin 150030, China;2. Heilongjiang Green Food Science Research Institute, Harbin 150028, China) Abstract: Rats with continuous low-dose intake of aflatoxin B1 (AFB1) were supplemented daily with live and inactivated suspensions of Lactobacillus rhamnosus and its cell-free culture supernatant at different concentrations, separately.To evaluate whether and how effectively Lactobacillus rhamnosus could reduce AFB1 in rats, serum biochemical and immune indicators were measured. All animals except those in the control group were given AFB1 at a dose of 50 μg/kg and administered intragastrically with Lactobacillus rhamnosus at a volume of 0.5 mL. The effects of Lactobacillus rhamnosus and its cell-free culture supernatant at different concentrations on the growth and immune function of rats were evaluated by determining body mass, serum cytokine levels and immunoglobulin (Ig) levels. The results showed that live Lactobacillus rhamnosus had a good adsorption capacity for AFB1 in rats and its effects varied significantly with its concentration. Live Lactobacillus rhamnosus at high dose had the best effect on maintaining the health status, liver function and immune function of rats. Although inactivated Lactobacillus rhamnosus also had certain adsorption capacity for AFB1 and significantly maintained aspartate aminotransferase (AST) activity, as well as IgM and IgG in rats, it was ineffective for cytokine stabilization. In contrast, the low concentration cell-free culture supernatant of Lactobacillus rhamnosus had a poor adsorption effect toward AFB1 in rats, which was effective only at high concentration. Keywords: Lactobacillus rhamnosus; aflatoxin B1; adsorption; immune system
DOI:10.7506/spkx1002-6630-20190425-331 中图分类号:TS252.1 文献标志码:A 文章编号:1002-6630(2020)09-0119-07 引文格式: 张居典, 刘亚文, 王喜泉, 等. 鼠李糖乳杆菌对大鼠黄曲霉毒素B1促排效果的评价[J]. 食品科学, 2020, 41(9): 119-125.DOI:10.7506/spkx1002-6630-20190425-331. http://www.spkx.net.cn收稿日期:2019-04-25 第一作者简介:张居典(1995—)(ORCID: 0000-0002-4448-6722),男,硕士研究生,研究方向为乳品科学与技术、乳品安全与质量管理。E-mail: 1161538486@qq.com*通信作者简介:许晓曦(1968—)(ORCID: 0000-0002-4350-0094),女,教授,博士,研究方向为乳品科学与技术、乳品安全与质量管理。E-mail: xiaoxi_xu01@163.comZHANG Judian, LIU Yawen, WANG Xiquan, et al. Evaluation of the effect of Lactobacillus rhamnosus on promoting the excretion of aflatoxin B1 in rats[J]. Food Science, 2020, 41(9): 119-125. (in Chinese with English abstract) DOI:10.7506/spkx1002-6630-20190425-331. http://www.spkx.net.cn
|