奥鹏易百

 找回密码
 立即注册

扫一扫,访问微社区

QQ登录

只需一步,快速开始

查看: 190|回复: 0

黑芝麻黑色素的分离纯化、结构表征及体外抗氧化活性

[复制链接]

2万

主题

27

回帖

6万

积分

管理员

积分
60146
发表于 2021-12-22 12:58:58 | 显示全部楼层 |阅读模式
扫码加微信
黑芝麻黑色素的分离纯化、结构表征及体外抗氧化活性
李杰1,2,贾栩超2,张瑞芬2,刘磊2,池建伟2,黄菲2,董丽红2,张名位1,2

(1福建农林大学食品科学学院,福州 350000;2广东省农业科学院蚕业与农产品加工研究所/农业农村部功能食品重点实验室/广东省农产品加工重点实验室,广州 510610)

摘要:【目的】对黑芝麻黑色素进行分离纯化,并对分离得到的不同级分进行结构表征,评价各级分的体外抗氧化活性,为黑芝麻黑色素的精细结构解析及功能活性研究提供理论依据。【方法】以黑芝麻皮为原料,通过碱提酸沉法得到黑芝麻黑色素。黑芝麻黑色素经HW-40C尺寸排阻色谱柱分离纯化,测定所得不同级分的得率、色价和黑色素含量,并采用紫外可见光谱(UV-Vis)、元素分析(EA)、傅里叶红外光谱(FT-IR)、核磁共振氢谱(1H-NMR)和碳谱(13C-NMR)、X-射线光电子能谱(XPS)、电子顺磁共振(EPR)、X-射线衍射(XRD)等手段表征黑色素不同级分的结构,通过DPPH(2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl)、ABTS(2,2'-Azinobis-(3-ethylbenzthiazoline- 6-sulphonate))自由基清除率、铁离子还原能力(ferric reducing antioxidant power,FRAP)和氧自由基吸收能力(oxygen radical absorption capacity,ORAC)评价不同级分的体外抗氧化活性。【结果】黑芝麻黑色素经过分离纯化得到黑色的Fr1和棕褐色的Fr2两个级分,得率分别为60%和24%,两个级分的分子量分别为38 800 Da和6 000 Da,Fr1的黑色素含量为782.16 mg SME·g-1 DW,Fr2的黑色素含量为884.66 mg SME·g-1 DW。元素分析结果表明Fr1为真黑色素而Fr2可能是异黑色素;Fr1和Fr2的紫外可见吸收光谱及红外光谱显示,两个级分均含有苯环、-OH、-NH2及-COOH等官能团结构;1H-NMR结果表明Fr1中含有更多的脂肪氢且芳香环上的氢大多数被取代,Fr2的芳香氢含量较Fr1高;固体核磁13C-NMR结果表明Fr1结构中含有更多的脂肪碳和羰基,Fr2含有更多的芳香碳;XPS结果显示两个级分黑色素的官能团含量不同,C1s结果表明Fr1的C-C(H)和C=O官能团的比例高于Fr2,但C-OH/C-N和O-C=O的比例低于Fr2;N1s结果表明Fr1的C-NH官能团比例高于Fr2,但芳香N的比例低于Fr2,且Fr1不含C-NH3+;O1s结果表明Fr1的C-OH官能团比例高于Fr2,但C=O官能团的比例略低于Fr2,且Fr1中不含吸收的H2O。EPR结果显示两个级分均具有较强的顺磁共振特性,Fr1和Fr2的g值分别为2.0078和2.0085,ΔHpp分别为0.7430和0.6950 mT;X-射线衍射表明黑芝麻黑色素的两个级分均为非晶态化合物,Fr1存在平面堆叠结构。Fr1和Fr2的DPPH自由基清除的IC50值分别为83.00和54.00 μg·mL-1,ABTS自由基清除的IC50值分别为53.00和30.00 μg·mL-1。Fr1和Fr2的FRAP值分别为1.05和1.62 mmol FeE·g-1 DW,ORAC值分别为3 141.80和4 143.76 μmol TE·g-1 DW。【结论】Fr1是黑芝麻黑色素的主要级分;Fr1主要是真黑色素,而Fr2可能是异黑色素。Fr1和Fr2结构中均含有羰基、羟基、氨基、芳环和氮杂环等官能团,Fr2结构芳香性较Fr1高;Fr2的DDPH和ABTS自由基清除能力、FRAP和ORAC抗氧化能力均高于Fr1。

关键词:黑芝麻;黑色素;分离纯化;结构表征;体外抗氧化活性

0 引言
【研究意义】黑芝麻(Sesamum indicum L.)又称胡麻、黑脂麻、巨胜等,是脂麻科(胡麻科)脂麻属植物脂麻的干燥成熟种子[1]。黑芝麻是中国传统的药食两用作物,古代医书记载黑芝麻具有补肝肾、益精血、养五脏、生津乌发、延缓衰老等功效[2]。现代营养学研究表明黑芝麻富含蛋白质、脂类、碳水化合物、维生素、矿物质等营养成分[3]。另外,黑芝麻中还含有一些如芝麻酚、芝麻素、黑色素等功能性成分,其中黑色素是黑芝麻的特征活性成分。研究报道黑芝麻黑色素具有多种药理保健活性,包括抗氧化、清除自由基、抗肿瘤、保肝、预防神经性疾病等[4-9];此外,还可作为天然色素添加到食品、医药和保健品等当中,具有广泛的应用前景。与黑豆、黑米中的花色苷类黑色素不同,黑芝麻黑色素是一种非均质的类多酚聚合物,结构十分复杂[10],目前人们对黑芝麻黑色素的化学结构仍缺乏深入认识。因此,对黑芝麻黑色素进行分离纯化和结构表征,明确其骨架结构信息,有助于推进对大分子黑色素结构的认知,也进一步为黑芝麻保健食品的开发提供可靠的科学支持,对黑芝麻精深加工与利用具有重要的科学意义和经济价值。【前人研究进展】已有学者对天然黑色素进行了研究,发现黑色素是由酚类或吲哚类化合物氧化聚合而形成的大分子,不溶于水和常见的有机溶剂(如己烷、氯仿、乙酸乙酯、乙醇、甲醇或丙酮),溶于碱水[10-12],存在于动物[13-14]、植物[10]和微生物[15-16]中。黑色素根据结构特征可以分为真黑色素(黑色或深棕色)、棕黑色素(红色至黄棕色)和异黑色素(黑色或棕色)[14,17]。目前对黑芝麻黑色素的研究主要集中在提取纯化工艺[18-24]、理化性质[20-23]及生物活性评价[4,6,8-9]等方面,也有部分学者对黑芝麻黑色素的结构进行了初步研究。前人研究表明碱提酸沉法是提取黑芝麻黑色素的有效手段[21-22]。徐利萍[21]通过研究得出黑芝麻黑色素可能是含有酚羟基、C=O、高度共轭的C=C、芳香羧基等官能团的真黑素,而不含棕黑素。有学者采用红外光谱、紫外光谱、元素分析等手段对黑芝麻黑色素进行研究[22,25-27],结果表明黑芝麻黑色素结构中含有羟基、羧基等官能团,并且存在吲哚结构,不含噻嗪环。陆懋荪等[28]、尹佩玉等[29]采用元素分析、紫外光谱、碱熔降解GC-MS等试验表明黑芝麻黑色素可能属于儿茶酚型的生物大分子。PANZELLA等[6]使用碱性过氧化氢分解黑芝麻色素并对降解产物进行分析,推断黑芝麻色素和聚松伯醇在结构上有一定的相似性。而黑芝麻黑色素的精细结构仍有待进一步研究明确,且黑芝麻黑色素的空间结构特征和自由基特性也有待探究。黑芝麻黑色素被报道具有抗氧化、清除自由基、抗肿瘤等生物活性,单良等[5]、徐利萍[21]、白亮[23]研究发现黑芝麻黑色素具有良好的DPPH·、·OH、O2-·、ABTS+等自由基清除能力,刘晓芳等[8]研究表明,黑芝麻黑色提取物具有保肝作用,这可能与其抗氧化作用有关。此外,KAMEI等[7]研究发现黑芝麻黑色素对体内外肿瘤细胞的生长有抑制功能。CHU等[30]报道天然黑芝麻黑色素可用于淋巴结肿瘤光热治疗。【本研究切入点】黑色素是一种非均质类多酚聚合物,目前有关黑芝麻黑色素结构的研究多是直接对粗黑色素提取物进行结构表征,获得的波谱信号复杂、重叠严重,且非黑色素杂质对结构表征有较大干扰;因此,本研究对黑芝麻黑色素进行分离纯化,将其划分为不同级分而后进行结构表征,获得不同级分的纯度、含量和精细结构信息、进而明确黑芝麻黑色素的级分组成及结构特征,降低结构表征的难度。此外黑色素是具有顺磁性的多聚物大分子,结构中含有大量的自由基,而黑芝麻黑色素的自由基特性和空间结构特征仍然未知。本研究首次采用电子顺磁共振(EPR)和X-射线衍射(XRD)对黑芝麻黑色素进行研究,明确其不同级分的自由基特性和空间结构特征。【拟解决的关键问题】通过HW-40C尺寸排阻色谱柱对黑芝麻黑色素粗提物进行分离,采用紫外可见光谱(UV-Vis)、元素分析(EA)、傅里叶红外光谱(FT-IR)、核磁共振氢谱(1H-NMR)和碳谱(13C-NMR)、X-射线光电子能谱(XPS)、电子顺磁共振(EPR)、X-射线衍射(XRD)等手段表征黑芝麻黑色素不同级分的结构,旨在明确不同级分的色素纯度、精细结构信息、自由基特性和空间结构特征,推进对黑芝麻黑色素结构的认知,并通过DPPH、ABTS、FRAP和ORAC 4种方法评价黑芝麻黑色素不同级分的体外抗氧化活性,明确黑芝麻黑色素不同级分抗氧化活性的差异,为后期黑芝麻黑色素的深入科学研究和开发利用提供理论依据。

1 材料与方法
试验于2019年1—7月在广东省农业科学院蚕业与农产品加工研究所/农业农村部功能食品重点实验室/广东省农产品加工重点实验室内进行。

1.1 材料与仪器
1.1.1 试验材料 黑芝麻,2018年9月购自山东济南,品种为中芝33号。

YOYOPEARL HW-40C尺寸排阻填料,日本东曹株式会社;DPPH(2,2-二苯基-1-苦基肼)、ABTS(2,2'-叠氮基-(3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸)、AAPH(2,2-偶氮二(2-甲基丙基咪)二盐酸盐)、Trolox(水溶性维生素E)、没食子酸(gallic acid,GA)、乌贼墨黑色素(sepia melanin,SM)、福林酚试剂均购自美国Sigma公司,FRAP试剂盒购自上海碧云天生物技术有限公司,其他试剂均为国产分析纯。

1.1.2 主要仪器 BS124S分析天平,赛多利斯科学仪器公司;FDU-2110真空冷冻干燥机,日本东京理化器械株式会社;EYELAN-1100旋转蒸发仪,东京理化器械株式会社;GZX-9420 MBE电热恒温鼓风干燥箱,上海博讯实业有限公司;UV-1800型紫外可见分光光度计,日本岛津有限公司;Agilent 1100型高效液相色谱仪(配备示差折光检测器),美国Agilent公司;Elementar Vario EL Cube元素分析仪,德国公司;JES-FA 200电子自旋共振波谱仪,日本东京理化器械株式会社;Axis Ultra DLD多功能X-射线光电子能谱仪,英国Kratos公司;锐影(Empyrean)X-射线粉末衍射仪,荷兰帕纳科公司;VERTEX70傅里叶变换红外光谱仪,德国公司;AVANCE AV 400型超导脉冲傅立叶变换核磁共振波谱仪,瑞士Bruker BioSpin公司;BioTek Gen5酶标仪,美国BioTek公司;TECAN Infinite 200酶标仪,瑞士Tecan公司。

1.2 黑芝麻黑色素原料的制备
1.2.1 黑芝麻黑色素粗提物的制备 黑芝麻黑色素的制备参考徐利萍[21]及康静静[22]的方法,稍作修改,取一定质量的黑芝麻皮,按料液比1 : 10(w/v)加入甲醇,常温下超声提取30 min,过滤,重复3次,所得黑芝麻皮于50℃烘箱中烘干。甲醇提取后的黑芝麻皮,按料液比1﹕40(w/v)加入30 g·L-1的氢氧化钠溶液,在60℃条件下水浴浸提90 min,过滤收集上清液,4 000 r/min离心5 min,合并上清液并抽滤,用6 mol·L-1 HCl调节pH=2,静置待其沉淀,离心弃上清,用水反复洗涤沉淀,分装,真空冷冻干燥后即得黑芝麻黑色素粗品。

1.2.2 黑芝麻黑色素的分离 取一定量的黑芝麻黑色素粗品,用0.1 mol·L-1 NaOH溶液溶解后通过TOYOPEARL HW-40C尺寸排阻色谱柱分离,洗脱液为2%的乙醇水,分离得到两个级分,分别记为Fr1和Fr2,Fr1呈黑色,Fr2呈棕褐色。

1.3 测定指标及方法
1.3.1 黑芝麻黑色素不同级分色价的测定 精确称取不同级分黑色素0.01 g,加入少量0.1 mol·L-1 NaOH溶液使黑色素溶解,配成1 mg·mL-1的母液,再加入氢氧化钠溶液稀释一定的倍数,在λmax处测定其吸光值,色价计算公式如下:

pagenumber_ebook=166,pagenumber_book=2480
式中,E:试样液浓度为1%,用1 cm比色皿,在最大吸收波长λmax处测得吸光值;A:实际测得样品的吸光值;C:被测试样的浓度(g·mL-1)。

1.3.2 黑芝麻黑色素不同级分光谱定量测定 参考USACH等[31]的方法,稍作修改,将乌贼墨黑色素标准品配置成一系列不同浓度的溶液,分别测定不同浓度标准品溶液在470 nm下的吸光值,绘制标准曲线;将不同级分黑色素样品配制成一定浓度的溶液,进行吸光值测定,代入乌贼墨黑色素标曲计算黑色素含量,黑色素含量以每g不同级分黑色素(干重)中所含的乌贼墨黑色素当量(Sepia melanin equivalents/g dry weight)表示,简写为mg SME·g-1 DW。

1.3.3 黑芝麻黑色素不同级分的GPC测定 色谱条件:TSK-GEL G4000SW凝胶柱,TSK-GEL G3000SW凝胶柱;流动相为pH 6.8的磷酸盐缓冲溶液,流速0.8 mL·min-1;柱温40℃;进样10 µL;标样为已知分子量的葡聚糖标准品(Dextran,分子量为670 000、410 000、270 000、150 000、50 000、12 000、5 000和1 000 Da,Sigma公司)。

测定方法:将已知分子量的葡聚糖标准品用流动相分别配制成1.0 mg·mL-1的溶液,进样量为10 µL,记录色谱图,以标准葡聚糖的分子量对洗脱体积进行回归处理。将黑色素样品用流动相配制成一定浓度的溶液,进样10 µL,测得黑色素样品的保留时间,利用标准曲线求得黑色素样品分子量。

1.3.4 黑芝麻黑色素不同级分的紫外-可见光谱(UV-Vis) 按照1.3.1的方法将黑色素配制成一定的浓度,用UV-1800型紫外分光光度计扫描190-800 nm范围内不同波长下溶液的吸光值,绘制吸光值随波长变化的曲线图。

1.3.5 黑芝麻黑色素不同级分的元素分析(EA) 采用Elementar Vario EL III型元素分析仪测定黑芝麻黑色素不同级分的C、H、N、S含量,每个样品3个平行。

1.3.6 黑芝麻黑色素不同级分的傅里叶红外光谱(FT-IR) 将样品和溴化钾于105℃烘箱中干燥至衡重,除去样品中的游离水或结晶水,以消除水分子对吸收峰的干扰。分别称取2 mg样品置于研钵中,放入40 mg干燥的溴化钾粉末,在红外灯光附近研磨均匀,将粉末装入压片模具中抽真空压片成薄片。采用傅立叶红外光谱仪对样品进行扫描测定,扫描波长范围400—4 000 cm-1。

1.3.7 黑芝麻黑色素不同级分的核磁共振

1.3.7.1 核磁共振氢谱(1H-NMR) 1H共振频率为600.17 MHz,谱宽12 019.2 Hz,采样脉冲宽度为13.2 s,两次采样间隔时间为0,各样品采样次数为16次。样品溶于DMSO中。

1.3.7.2 固体核磁碳谱(13C-NMR) 固体核磁参考DUFF等[32]的方法,稍作修改,采用交叉极化/魔角旋转固体核磁共振。测试条件:共振频率为100.628 MHz,4 mm CP/MAS固体探头,场强9.4 T。

1.3.8 黑芝麻黑色素不同级分的XPS 参考XIAO等[33]的方法,稍作修改,采用XPS测定黑芝麻黑色素不同级分的表面化学成分。使用单色化的Al Kα X射线作为激发源(hν=1 486.60 eV),工作电压为15 kV,功率为150 W。对每个样品以160 eV的通能进行扫描(0—1 400 eV),然后以20 eV的通能进行Ti 2p、C 1s、N 1s和O 1s的高分辨率光谱扫描,根据灵敏度系数,从高分辨率光谱中得到各元素的原子百分比。将中性碳1s峰(C-C(H))设置为285.00 eV作为电荷校正的参考标准。

1.3.9 黑芝麻黑色素不同级分的EPR 参考YAO等[34]的方法稍作修改,取适量烘干后的黑色素样品于石英管中,插入样品孔,室温下进行波谱扫描。检测条件:工作频率为9.86 GHz(X波段),调制频率为100 kHz,调制幅度为1 G,微波功率为1.85 mW,扫描时间为20.48 s。中心归档:3 509.650 G,扫描宽度:50 G,静态场:3 484.65 G。

1.3.10 黑芝麻黑色素不同级分的X-射线衍射 将烘干后的黑色素样品压入直径为1 cm、厚度为1 mm的圆片中。使用锐影X射线衍射仪对样品进行扫描。检测条件:Cu靶Kα射线,电压40 kV,电流40 mA,发散射狭缝1/8°,防散射狭缝1/4°,发散射狭缝7.5 mm,2θ范围:3°—80°,步长0.02°,每步停留时间40 s。

参考CASADEVALL等[35]的方法,将散射强度作为散射角的函数,数据由角度坐标转换为Q标度,Q是X射线光子通过角度θ弹性散射时动量变化的大小。参数Q与散射角θ的关系式为:Q=(4πsinθ)/λ,λ为X-射线光子波长(λ=1.54 A)。将Q峰最大值与分子层之间的距离R联系起来,其中R=2π/Q,R代表距离的平均值,与Q空间中堆叠特征的宽度有关。

1.3.11 黑芝麻黑色素不同级分的体外抗氧化活性测定

1.3.11.1 DPPH自由基清除能力的测定 黑芝麻黑色素不同级分的DPPH自由基清除能力参考TU等[14]和PĺO-LEÓN等[36]的方法,并稍作修改,称取3.94 mg DPPH溶解于100 mL 95%的乙醇中配成0.1 mmol·L-1的DPPH工作液。将不同级分的黑色素配成不同浓度梯度的溶液,测定他们对DPPH自由基的清除能力。准确吸取1.0 mL不同浓度的样品溶液与现配制的2.0 mL DPPH工作液充分混合,室温避光反应30 min,测定其在517 nm吸光度A1,同时测定2 mL 95%乙醇溶液与1 mL样品溶液的吸光度A2以及2 mL DPPH工作液与1 mL样品溶剂的吸光度A0。每个样品每个浓度重复3次,取平均值,计算DPPH自由基清除率,同时求得清除率为50%时所需样品的浓度,即IC50值。按下列公式计算DPPH自由基清除率:

pagenumber_ebook=167,pagenumber_book=2481
式中,A0:空白对照,表示2 mL DPPH工作液与1 mL样品溶剂反应后的吸光值;A1:样品组,表示2 mL DPPH工作液与1 mL样品反应后的吸光值;A2:样品空白,表示2 mL 95%乙醇与1 mL样品反应后的吸光值。

1.3.11.2 ABTS自由基清除能力的测定 黑芝麻黑色素不同级分的ABTS自由基清除能力参考PĺO-LEÓN等[36]的方法,稍作修改,ABTS储备液的配制:称取66.23 mg过硫酸钾溶解于100 mL蒸馏水中配制成浓度为2.45 mmol·L-1的过硫酸钾溶液,再称取19.20 mg ABTS溶解于5 mL过硫酸钾溶液中配制成浓度为7 mmol·L-1的ABTS储备液,在室温、避光条件下放置13—16 h。ABTS待测液的配制:将ABTS储备液在波长λ=734 nm处以10 mmol·L-1、pH 8的磷酸盐缓冲液稀释至吸光度为0.70±0.05。准确吸取1 mL不同浓度梯度的黑色素样品溶液与4 mL ABTS待测液混合,涡旋震荡30 s,避光反应6 min,在734 nm波长处测定吸光度A1,同时测定4 mL样品溶剂与1 mL样品的吸光度A2以及4 mL ABTS待测液与1 mL样品溶剂的吸光度A0。每个样品每个浓度重复3次,取平均值,计算ABTS自由基清除率,同时求得清除率为50%时所需样品浓度,即IC50值。按下列公式计算ABTS自由基清除率:

pagenumber_ebook=167,pagenumber_book=2481
式中,A0:空白对照,表示4 mL ABTS待测液与1 mL样品溶剂反应后的吸光值;A1:样品组,表示4 mL ABTS待测液与1 mL样品溶液反应后的吸光值;A2:样品空白,表示4 mL样品溶剂与1 mL样品溶液反应后的吸光值。

1.3.11.3 铁离子还原力(FRAP)的测定 参照董丽红等[37]的方法,具体步骤参考FRAP测定试剂盒说明书。向96孔板的每个检测孔中加入现配的180 μL FRAP工作液。空白对照孔中加入5 μL蒸馏水,标准曲线检测孔内加入5 μL各种浓度的FeSO4-7H2O标准溶液。样品检测孔内加入5 μL待测样品溶液,37℃孵育1 min后,于593 nm下测定吸光值。FRAP结果以每g不同级分黑色素(干重)中所含的FeSO4-7H2O当量(FeSO4-7H2O equivalents/g dry weight)表示,简写为mmol FeE·g-1 DW。

1.3.11.4 ORAC抗氧化能力的测定 参考ZHANG等[38]的方法,并稍作修改。Trolox标准品及各种待测样品用75 mmol·L-1 pH 7.4磷酸盐缓冲液稀释到适当浓度,反应用黑色96孔板,除样品孔外,另设空白孔、对照孔、不同浓度的标准溶液孔(Trolox)和阳性对照孔(没食子酸),各处理均设3个复孔。先向空白孔加入20 μL磷酸盐缓冲液,其余孔分别加入样品溶液、不同浓度的Trolox标准溶液(6.25、12.5、25和50 μmol·L-1)以及17.5 μmol·L-1的没食子酸溶液,将96孔板放入提前调节温度至37℃的酶标仪中孵育10 min;然后每孔加入200 μL 0.96 μmol·L-1荧光素钠工作液,继续孵育20 min后,除对照孔外,每孔再加入20 μL新鲜配置的119 mmol·L-1 AAPH溶液。最后,将96孔板立即放入酶标仪中,在激发波长485 nm、发射波长520 nm下测定各孔荧光值,每4.5 min测定一次,共35个循环。计算各孔荧光强度曲线下的面积(AUG),减掉空白孔的AUG,即得到各孔的Net AUG,根据不同浓度Trolox的Net AUG做标准曲线,计算各样品的ORAC值。ORAC结果以每g不同级分黑色素样品(干重)中所含的μmol Trolox当量(Trolox equivalents/g dry weight)表示,简写为μmol TE·g-1 DW。

1.3.12 数据分析 采用Origin9.0软件和SPSS19.0软件进行数据分析及作图。试验结果用均数±标准差(Mean±SD)表示,每组试验重复3次。

2 结果
2.1 黑芝麻黑色素不同级分得率及色价
如表1所示,黑芝麻皮经碱提酸沉得到黑芝麻黑色素粗提物,粗黑色素经过HW-40C尺寸排阻色谱柱分离后得到Fr1(黑色)和Fr2(棕褐色)两个级分,得率分别为60%和24%,可知Fr1为黑色素的主要级分。从色价测定结果来看,Fr1的色价低于粗黑色素,Fr2的色价高于粗黑色素,表明Fr2的纯度高于Fr1。

表1 黑芝麻黑色素不同级分的得率及色价
Table 1 The yield and color value of different fractions of black sesame melanin

pagenumber_ebook=168,pagenumber_book=2482
不同字母表示差异显著(P<0.05)。下同
Values not sharing a common letter are significantly different (P<0.05).The same as below

2.2 黑芝麻黑色素不同级分光谱定量测定结果
以乌贼墨黑色素为标准品,对黑芝麻黑色素不同级分采用吸收光谱法进行测定,由表2可知,Fr1的含量为782.16 mg SME·g-1 DW,Fr2的含量为884.66 mg SME·g-1 DW,通过吸收光谱法测定的黑芝麻黑色素两个级分的纯度为Fr2较Fr1高。

表2 黑色素不同级分光谱定量结果
Table 2 Quantitative results of different fractions of melanin

pagenumber_ebook=168,pagenumber_book=2482
2.3 黑芝麻黑色素不同级分GPC结果
以标准葡聚糖的分子量对洗脱体积进行回归得到葡聚糖Dextran系列标准品的标准曲线方程,并由标准曲线求得Fr1和Fr2的重均分子量Mw分别为38 800和6 000 Da,数均分子量Mn分别为18 200和3 600 Da,分子量分布宽度分别为2.13和1.67(表3)。

2.4 黑芝麻黑色素不同级分紫外可见吸收光谱
黑芝麻黑色素的两个级分与分离前粗黑色素的紫外吸收光谱如图1所示,Fr1和Fr2的紫外可见吸收光谱均为典型的黑色素吸收光谱,它在紫外区吸收强烈,随着波长的增加,吸收逐渐减弱,两个级分在210 nm左右均有一个明显的吸收峰,在270—280 nm处有一小的吸收峰,在可见光范围内没有最大吸收峰,且在270—280 nm处Fr1的吸收低于粗黑色素与Fr2。

2.5 黑芝麻黑色素不同级分元素分析结果
黑芝麻黑色素不同级分的元素分析结果如表4所示,Fr1的C、N、H、S元素含量均高于Fr2,Fr1的N/C和H/C高于Fr2。Fr1的C、H、S元素含量与粗黑色素相当,但N元素含量高于粗黑色素,Fr2的C、H、N、S元素含量低于粗黑色素。Fr1、Fr2及粗黑色素的S元素与其他元素相比,含量很低,可忽略不计。

pagenumber_ebook=169,pagenumber_book=2483
图1 黑芝麻黑色素不同级分紫外可见吸收光谱
Fig.1 UV-visible absorption spectrum of different fractions of black sesame melanin

表3 黑色素不同级分GPC结果
Table 3 GPC results of different fractions of melanin

pagenumber_ebook=169,pagenumber_book=2483
表4 黑芝麻黑色素不同级分元素分析
Table 4 Elemental analysis of different fractions of black sesame melanin

pagenumber_ebook=169,pagenumber_book=2483
2.6 黑芝麻黑色素不同级分的FT-IR
黑芝麻黑色素不同级分的红外光谱如图2所示,与文献报道[17,34,39]的乌贼墨、栗子壳及合成黑色素等的红外光谱相似,Fr1和Fr2在3 500—3 300 cm-1处均有一较宽的吸收峰,且吸收较强,该处为-OH、-NH2的伸缩振动;两个级分在2 900—2 800 cm-1处有两个较弱的吸收峰,属于脂肪族中饱和烃基C-H的伸缩振动;在1 650 cm-1处的吸收峰为芳香族C=C键的拉伸与-COOH的对称拉伸振动,1 450 cm-1处的吸收是脂肪族C-H变形引起,1 400 cm-1处的吸收峰是酚羟基的-OH变形和C-O伸缩以及COO-基团的对称伸展引起,但在1 650、1 450和1 400 cm-1处Fr2较Fr1的吸收变得更强,Fr1在1 540 cm-1左右有较弱吸收峰,Fr2在1 540 cm-1吸收峰消失,可能与N-H变形和C-N拉伸有关;在1 250 cm-1处的吸收峰是由于-COOH中C=O的拉伸和O-H的变形以及酚的C-O键的拉伸,1 070和1 030 cm-1处均有吸收峰,属于苯环上的C-H键弯曲振动引起,Fr2较Fr1的吸收变得更强;900—700 cm-1间有许多较弱的吸收峰,是芳环和芳杂环上氢的弯曲振动引起,700 cm-1以下是脂肪碳上氢的振动吸收峰。

2.7 黑芝麻黑色素不同级分的核磁共振
pagenumber_ebook=170,pagenumber_book=2484
图2 黑芝麻黑色素不同级分FT-IR图谱
Fig.2 FT-IR spectrum of different fractions of black sesame melanin

pagenumber_ebook=170,pagenumber_book=2484
图3 黑芝麻黑色素不同级分的1H-NMR谱图
Fig.3 1H-NMR spectrum of different fractions of black sesame melanin

2.7.1 核磁共振氢谱(1H-NMR) 黑芝麻黑色素不同级分的核磁共振氢谱如图3所示,Fr1与Fr2的核磁共振氢谱脂肪区谱峰较为接近,芳香区谱峰有明显区别。高场区δ 0.82处吸收峰为脂肪烃末端甲基的特征峰;δ 1.23为中心的吸收峰主要是直链或支链烷烃基团中的亚甲基峰;δ 2.50处的峰为DMSO溶剂峰;δ 3.37处的谱峰是水在氘代二甲基亚砜中的残留吸收,化学位移在3.00—5.00 ppm的谱峰为与电负性较强的基团相连碳上的氢,例如连氧碳和连氮碳上的质子,两个级分在此区间内都有较弱的吸收峰;低场区δ 6.00—8.40区域内出现较弱的宽峰,属于芳香氢的吸收峰,部分活泼氢也在此区域内出现。芳香氢化学位移跨度大,说明各种芳香氢所处的化学环境差别较大,这些谱峰可能是芳环或芳杂环上的质子。从图谱峰面积区域可以看出,芳香氢和脂肪氢的比例为Fr1小于Fr2,表明Fr1中芳香结构单元少,以饱和结构单元为主,或者Fr1结构中芳环取代基较多。

2.7.2 固体核磁(CP/MAS 13C-NMR) 黑芝麻黑色素不同级分的核磁共振碳谱如图4所示,在脂肪区(10—95 ppm)、芳香区(95—165 ppm)和羰基官能团区(165—220 ppm)都有谱峰出现。表明黑芝麻黑色素两个级分中除了含有芳香聚合物的骨架外,还连接有其他结构片段如脂肪酸、氨基酸和蛋白质等。化学位移在10—40 ppm的谱峰可能是脂肪链上的甲基、亚甲基或者次甲基。化学位移在55 ppm的谱峰可能是连氮的饱和碳或者甲氧基,化学位移在73 ppm处的谱峰是连氧的饱和碳。化学位移在100—140 ppm的谱峰是苯环或者双键上的不饱和碳,140—165 ppm为连接氧、氮等杂原子的芳香不饱和碳的吸收峰。165—190 ppm的谱峰为羧酸、羧酸酯、酰胺及醌式结构中的羰基吸收峰。Fr1中的羰基区域吸收峰较强,芳香碳区域(95—165 ppm)吸收峰面积小于脂肪碳区域吸收面积(10—95 ppm),表明Fr1结构中可能含有较多的饱和结构单元,可能是脂肪酸。Fr2的羰基区域吸收峰相对较小,芳香碳区域吸收峰面积与脂肪碳区域相当,表明结构中不饱和结构占比较高。两个级分相比,Fr1中羰基和饱和碳结构单元含量较高,可能是结构中有较多脂肪酸和蛋白质取代,而Fr2芳香结构单元(芳环、双键)占比较高。

pagenumber_ebook=170,pagenumber_book=2484
图4 黑芝麻黑色素不同级分的CP/MAS 13C-NMR谱图
Fig.4 CP/MAS 13C-NMR spectrum of different fractions of black sesame melanin

2.8 黑芝麻黑色素不同级分的XPS
为了确定黑色素不同级分的官能团百分比,将C1s、O1s、N1s的高分辨率光谱曲线拟合如图5。将C1s扫描得到的原始数据中最大的峰移至285.00 eV对整个光谱进行校正,进行峰的拟合,C1s图谱有5个谱峰,分别为285.00 eV的C-C(H)、286.40 eV的C-OH/C-N、288.00 eV的C=O、289.00 eV的O-C=O和π→π键。N1s图谱有3个谱峰,分别对应400.30 eV的-C-NH、399.50 eV的芳香N及402.00 eV的C-NH3+3个峰。O1s图谱在531.50 eV和533.00 eV处有两个主要谱峰,分别来自C=O和C-OH。

不同级分官能团的比例如图6所示,C、N、O 3个元素分峰结果表明,Fr1和Fr2两个级分官能团的含量不同,在C1s谱中,Fr1的C-C(H)和C=O官能团的含量高于Fr2,而Fr1的C-OH/C-N和O-C=O官能团的含量低于Fr2,Fr1的C=O和O-C=O之间比例为7.90,Fr2的C=O和O-C=O之间比例为2.10;在N1s谱中,Fr1的C-NH官能团含量高于Fr2,而Fr1的芳香N含量低于Fr2,可能是Fr2比Fr1含有更多的杂环结构单元,且Fr1中不含质子化的C-NH3+;在O1s谱中,Fr1的C-OH官能团的含量高于Fr2,但Fr1的C=O官能团含量略低于Fr2,且Fr1中不含吸收的H2O。

pagenumber_ebook=172,pagenumber_book=2486
图5 黑芝麻黑色素不同级分的C1s、N1s和O1s的XPS高分辨率光谱图
Fig.5 High-resolution spectrum of C1s, N1s and O1s of different fractions of black sesame melanin

pagenumber_ebook=172,pagenumber_book=2486
图6 黑芝麻黑色素不同级分的官能团相对百分比
Fig.6 Relative percentage of different functional groups of different fractions of black sesame melanin

2.9 黑芝麻黑色素不同级分的EPR
黑色素因含有自由基而具有顺磁共振特性,在EPR光谱中g值表示光谱分裂因子,线宽表示磁共振弛豫的强弱,通常用一次微分曲线上两极值之间的距离表示(以G为单位),称“峰对峰宽度”,记作ΔHpp。由图7可知黑芝麻黑色素分离后的两个级分均显示出强烈的共振吸收,由单个对称线组成,没有超精细分裂,Fr1较Fr2显示出较强的共振吸收,类似于不同来源的其他合成黑色素和天然黑色素的EPR光谱。Fr1和Fr2的g值分别为2.0078和2.0085,Fr1和Fr2的ΔHpp分别为0.7430和0.6950 mT。

2.10 黑芝麻黑色素不同级分的X-射线衍射
pagenumber_ebook=172,pagenumber_book=2486
图7 黑芝麻黑色素不同级分的EPR光谱
Fig.7 EPR spectrum of different fractions of black sesame melanin

pagenumber_ebook=172,pagenumber_book=2486
图8 黑芝麻黑色素不同级分的X-射线衍射图谱
Fig.8 X-ray diffraction pattern of different fractions of black sesame melanin

黑芝麻黑色素不同级分的X-射线衍射图谱如图8所示,由图可知Fr1和Fr2的X-射线衍射图谱有明显区别,Fr1的X-射线衍射图谱中出现了弥散的较弱的“隆峰”,而Fr2的X-衍射图谱中未发现“隆峰”,Fr1在2θ为22.52°处有较为突出的“隆峰”,由Q=(4πsinθ)/λ,Q值为1.59,由R=2π/Q,R值为3.94 Å。

2.11 黑芝麻黑色素不同级分的体外抗氧化活性
采用DPPH、ABTS、FRAP和ORAC四种方法评价黑芝麻黑色素不同级分的体外抗氧化活性,结果如表5所示,粗黑色素与Fr1和Fr2都具有DPPH和ABTS自由基清除能力,两种自由基清除率IC50值大小依次为Fr1>Fr2>粗黑色素>Vc,说明Fr1的DPPH和ABTS自由基清除能力弱于Fr2,且均弱于粗黑色素与天然抗氧化剂Vc。Fr1的FRAP值与粗黑色素差异不显著,Fr2的FRAP值显著高于Fr1与粗黑色素,说明Fr2的FRAP抗氧化能力较强。ORAC值大小依次为:Vc>Fr2>粗黑色素>Fr1,说明Fr2的ORAC抗氧化能力强于Fr1。以上结果表明,Fr2的DPPH和ABTS自由基清除能力、FRAP和ORAC抗氧化能力均高于Fr1,说明Fr2的体外抗氧化活性较Fr1好。

表5 黑芝麻黑色素不同级分的体外抗氧化活性
Table 5 Antioxidant activities of different fractions of black sesame melanin

pagenumber_ebook=173,pagenumber_book=2487
3 讨论
3.1 黑芝麻黑色素不同级分结构表征
黑芝麻黑色素经分离得到了黑色的Fr1和棕褐色的Fr2,两个级分的紫外可见吸收光谱与刘元法等[26]报道的黑芝麻黑色素的吸收特征一致,其他天然黑色素如鱿鱼墨、乌骨鸡黑色素也表现出同样的紫外吸收特征[14,40-41]。TU等[14]认为天然黑色素的紫外吸收光谱在270—280 nm处的平台吸收峰可能是因为与天然黑色素结合的蛋白质引起的,因此,可以推测本研究分离得到的两个黑芝麻黑色素级分中可能都含有蛋白质。

由元素分析结果可知,Fr1含有C、H、N、S四种元素,Fr2含有C、H、N而不含S元素,ITO等[42]报道真黑色素N元素含量为6%—9%,不含S元素(0—1%);棕黑色素N元素含量为8%—11%,S元素含量为9%—12%;KAMEI等[7,43]报道异黑色素含有极少量的氮甚至不含氮,仅存在于高等植物和真菌中,属于酚类与蛋白质结合的聚合物。根据Fr1和Fr2的N元素和S元素含量可知,黑芝麻黑色素的两个级分均不是棕黑色素,Fr1可能为真黑色素,Fr2可能为异黑色素,与陆懋荪等[28]的元素分析结果基本一致。

黑芝麻黑色素的两个级分在3 500—3 300 cm-1、1 650 cm-1、500 cm-1附近均有较强的吸收峰,由此推测Fr1和Fr2中含有-OH、-NH2、-COOH、C=O等官能团,与陆懋荪等[28]的红外结果基本一致。与鱿鱼墨黑色素[40]相比,Fr1和Fr2在2 900—2 800 cm-1处存在较弱的吸收峰,在1 070 cm-1及1 030 cm-1处有吸收峰,而鱿鱼墨黑色素在该处均无吸收峰,可能是黑芝麻黑色素的两个级分含有较多的饱和结构单元,且芳香环上含有较少的取代物。

核磁共振氢谱结果表明,Fr2和Fr1在芳香区和脂肪区均有吸收,但Fr2比Fr1芳香区谱峰多,表明Fr2结构中可能含有更多的芳香结构单元,而Fr1结构中芳香骨架上有较多的饱和单元(脂肪酸、氨基酸和蛋白质)等取代。陆懋荪等[28]的核磁氢谱结果表明芝黑素I的芳香性低于芝黑素II,与本研究结果一致,而本研究中,Fr1和Fr2在δ 0—2 ppm处的吸收峰强度较陆懋荪的弱了许多,该处属于脂肪链烷烃的吸收区域,可能是Fr1和Fr2中脂肪酸的含量较少。KATRITZKY等[44]用核磁共振氢谱对乌贼墨黑色素进行了结构表征,乌贼墨黑色素氢谱中芳香区信号呈现精细裂分特征,而黑芝麻黑色素两个级分氢谱芳香区均是簇峰,究其原因是乌贼墨黑色素构成单元较为单一,以5,6-二羟基吲哚(DHI)和5,6-二羟基吲哚二羧酸(DHICA)为主;而黑芝麻黑色素的构成单元种类较多,连接方式多样,因而呈现典型的杂聚物核磁共振氢谱特征。本研究中Fr1中羰基和脂肪碳结构单元含量较Fr2高,但芳香区碳信号明显弱于Fr2,表明Fr1结构中可能有较多脂肪酸和蛋白质取代,而Fr2芳香结构单元(芳环、双键)占比较Fr1高。ADHYARU等[45]研究发现乌贼墨黑色素的碳谱在脂肪区(10—95 ppm)、芳香区(95—165 ppm)和羰基官能团区(165—220 ppm)都有谱峰出现,与黑芝麻黑色素两个级分的固体核磁类似。乌贼墨黑色素中连接杂原子的芳香碳信号(140—160 ppm)较黑芝麻黑色素的两个级分强,而黑芝麻黑色素两个级分在100—130 ppm处碳信号较强,表明乌贼墨黑色素芳香结构中有更多氧、氮等杂原子取代,而黑芝麻黑色素的两个级分结构中芳香碳上氢原子和碳原子取代较多。

高分辨率XPS为黑色素化学结构表征的有力工具[33,46],本研究首次采用XPS高分辨率光谱对黑芝麻黑色素的两个级分进行研究。由C1s分峰结果可知,Fr1结构中含有较多的酮羰基,而Fr2结构中含有更多的羧羰基,Fr1的羰基含量多于Fr2,与核磁共振碳谱结果一致。Fr1的C=O和O-C=O之间比例为7.9,Fr2的C=O和O-C=O之间比例为2.1,与XIAO等[33]报道的乌贼墨(7.0)和乌鸦(1.9)的结果类似,表明Fr2较Fr1含有更多的单体及其氧化物。N1s谱中,Fr1的C-NH官能团的含量高于Fr2,而Fr1的芳香氮的含量低于Fr2,且Fr1中不含质子化的C-NH3+,说明Fr2中的氮多是以芳香氮的形式存在,表明结构中可能存在更多的吲哚结构单元,Fr1中的氮多是脂肪氮,可能是一些蛋白质上的氨基。在O1s谱中,Fr1的C-OH官能团的含量高于Fr2,但Fr1的C=O官能团含量略低于Fr2,且Fr1中不含吸收的H2O,说明Fr1中的羟基含量高,结合核磁共振碳谱(60—90 ppm吸收峰较高)推测其可能更多的以醇羟基的形式存在。

黑芝麻黑色素的两个级分均显示出较强的共振吸收,与鱿鱼墨黑色素的EPR光谱类似。文献报道鱿鱼墨黑色素g值为2.0037,ΔHpp为0.5090 mT,Fr1和Fr2的g值分别为2.0078和2.0085,均略高于文献报道[34,47]的黑色素g值,这是由黑芝麻黑色素的结构决定的,Fr1和Fr2的ΔHpp分别为0.7430和0.6950 mT,均高于鱿鱼墨黑色素的ΔHpp,在0.4—0.8 mT天然黑色素范围内[34]。以上说明黑芝麻黑色素不同级分与鱿鱼墨黑色素具有相似的自由基性质。

晶体在X-射线衍射光谱中通常产生尖锐的峰,非晶态化合物如黑色素和多糖在衍射光谱中产生广泛的特征,称为非布拉格特征,这是由于无规则和重复结构的相干散射造成的。研究报道[35,48-50]黑色素都有一个基本的衍射单元,该单元类似平面石墨烯结构,在堆积距离上有所不同,堆积峰是黑色素的一个普遍特征。Fr1的X-射线衍射图谱中出现了弥散的较弱的“隆峰”,Q值为1.59,R值为3.94 Å,Fr2中并未出现类似的“隆峰”,表明二者空间结构不同。Fr1结构中存在平面共轭结构的堆叠,而Fr2中堆叠结构较少或者不存在。研究报道[35,48-49]乌贼墨黑色素的Q值为1.60,R值为3.46 Å,黑曲霉黑色素的Q值为1.41,R值为4.45 Å,鸡腿菇黑色素的Q值为1.53,R值为4.10 Å,由此发现不同的黑色素Q值与层堆叠距离会有所不同,本研究中Fr1与乌贼墨黑色素的Q值与R值最为接近。

3.2 黑芝麻黑色素不同级分体外抗氧化活性分析
本研究采用DPPH、ABTS、FRAP、ORAC四种方法评价黑芝麻黑色素不同级分的抗氧化活性,其中,DPPH、ABTS、FRAP三种抗氧化均属于单电子转移(ET)机制,是体外评价活性物质抗氧化能力的常见方法,操作简单[51-52];而ORAC抗氧化属于经典的氢原子转移(HAT)机制,是目前国际上常用的一种评价食品抗氧化能力的方法,较一般的自由基清除法更准确灵敏[52-53]。

单良等[5]研究表明黑芝麻黑色素具有清除DPPH·、O2-·、·OH等自由基的能力,黑色素的这种特性与其结构中含有的酚羟基和醌式结构有关。JACOBSON等[54]研究表明黑色素的抗氧化功能可能与其结构中含有的类似醌和对苯二酚的残基结构有关。金春英等[55]研究得出具有多酚羟基或易氧化成醌式共轭结构的化合物对自由基有显著的清除作用。以上研究均表明酚羟基和醌式结构与抗氧化活性密切相关。本研究4种抗氧化方法结果都表明Fr2的抗氧化活性较Fr1好,这与两个级分的结构密切相关。核磁共振碳谱表明Fr2含有更多的芳香结构,也意味着Fr2可能具有更多的酚羟基和醌式羰基,而Fr1结构中饱和结构单元占比大,说明脂肪酸和蛋白质取代较多,这些结构往往不具备清除自由基能力,导致Fr1的抗氧化活性不如Fr2。VATE等[56]研究发现鱿鱼墨黑色素具有DPPH、ABTS自由基清除能力与铁离子还原(FRAP)能力,抗氧化能力依次为(179.60±2.10)μmol TE·g-1蛋白质、(957.80±89.30)μmol TE·g-1蛋白质、(171.10±7.30)μmol TE·g-1蛋白质;TU等[14]研究得出乌鸡黑色素和合成黑色素的DPPH自由基清除率的IC50值分别为(37.30±2.62)μg·mL-1和(49.20±2.48)μg·mL-1,均高于Fr1和Fr2的IC50值,低于天然抗氧化剂Vc的IC50值((13.00±1.04)μg·mL-1),说明Fr1与Fr2的DPPH自由基清除能力低于乌鸡黑色素。

本研究通过分离纯化结合多种波谱学手段对黑芝麻黑色素的结构特征、自由基特性和空间结构进行了表征,在前人研究基础上推进了对黑芝麻黑色素的认知。目前黑芝麻黑色素不同级分的构成单元及连接方式仍未明确,后续研究应尝试采用合适的降解手段和更加先进的波谱学表征技术(如傅立叶变换离子回旋共振质谱)对其结构进行研究,明确黑芝麻黑色素的精细结构。此外,本研究通过体外抗氧化手段明确了黑芝麻黑色素的抗氧化活性,其体内抗氧化作用有待后续研究,将通过动物试验进一步证实。

4 结论
本研究采用HW-40C尺寸排阻色谱柱对黑芝麻黑色素进行分离纯化,得到Fr1和Fr2两个级分,分子量分别为38 800 Da和6 000 Da,且Fr2的纯度较Fr1高。利用多种波谱学手段对两个级分的结构进行表征并评价它们的抗氧化活性,结果表明Fr1为黑芝麻黑色素的主要级分;结构分析表明Fr1主要是真黑色素,Fr2可能是异黑色素。Fr1和Fr2结构中均含有羰基、羟基、氨基、芳环和氮杂环等官能团,Fr2结构芳香性较Fr1高;Fr2的DDPH和ABTS自由基清除能力、FRAP和ORAC抗氧化能力均高于Fr1。

References

[1] 李昌, 聂少平, 谢建华.黑芝麻黑色素的研究进展.食品工业科技,2010, 31(6): 414-416.LI C, NIE S P, XIE J H.Research progress in melanin of black sesame.Science and Technology of Food Industry, 2010, 31(6):414-416.(in Chinese)

[2] 李亚会, 汪学德, 李晨曦, 马宇翔, 徐彦辉.黑芝麻与白芝麻各组分抗氧化物质及抗氧化活性研究.中国油脂, 2018, 43(4): 37-41, 47.LI Y H, WANG X D, LI C X, MA Y X, XU Y H.Antioxidant substances and antioxidant activities of each fraction of black sesame and white sesame. Chinese Oils and Fats, 2018, 43(4): 37-41, 47.(in Chinese)

[3] 李林燕, 李昌, 聂少平.黑芝麻的化学成分与功能及其应用.农产品加工(学刊), 2013(11): 58-62, 66.LI L Y, LI C, NIE S P.Chemical components, biological functions and applications of Sesamum indicum L.(Black Sesame).Academic Periodical of Farm Products Processing, 2013(11): 58-62, 66.(in Chinese)

[4] XU J, CHEN S B, HU Q H.Antioxidant activity of brown pigment and extracts from black sesame seed (Sesamum indicum L.).Food Chemistry, 2005, 91(1): 79-83.

[5] 单良, 徐利萍, 金青哲, 刘元法, 王兴国.黑芝麻黑色素的稳定性及自由基清除活性.安徽农业科学, 2008, 36(26): 11527-11531,11541.SHAN L, XU L P, JIN Q Z, LIU Y F, WANG X G.Stability and free radical scavenging activities of black sesame melanin.Journal of Anhui Agricultural Sciences, 2008, 36(26): 11527-11531, 11541.(in Chinese)

[6] PANZELLA L, EIDENBERGER T, NAPLITANO A, D′ISCHIA M.Black sesame pigment: DPPH assay-guided purification, antioxidant/antinitrosating properties, and identification of a degradative structural marker.Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2012, 60(36):8895-8901.

[7] KAMEI H, KOIDE T, HASHIMOTO Y, KOJIMA T, HASEGAWA M, UMEDAL T.Effect of allomelanin on tumor growth suppression in vivo and on the cell cycle phase.Cancer Biotherpy and Radiopharmaceuticals, 1997, 12(4): 273-276.

[8] 刘晓芳, 徐利, 刘娜, 姬媛媛, 邓昌沪, 刘俊田.黑芝麻和黑豆色素提取物对急性肝损伤的保护作用.中国实验方剂学志, 2008,14(5): 68-70.LIU X F, XU L, LIU N, JI Y Y, DENG C H, LIU J T.Protective effects of black sesame and black bean pigment extracts on acute liver injury.Chinese Journal of Experimental Traditional Medical Formulae,2008, 14(5): 68-70.(in Chinese)

[9] PANZELLA L, EIDENBERGER T, NAPOLITANO A.Anti-amyloid aggregation activity of black sesame pigment: toward a novel alzheimer’s disease preventive agent.Molecules, 2018, 23(3): 1-13.

[10] VARGA M, BERKESI O, DARULA Z, MAY N V, PALÁGYI A.Structural characterization of allomelanin from black oat.Phytochemistry, 2016, 130: 313-320.

[11] HSIEH P H, LIEN T F.Study of the physico-chemical properties and antioxidant activity of extracted melanins.Journal of Agricultural Science, 2012, 4(9): 217-229.

[12] WANG H S, PAN Y M, TANG X J, HUANG Z Q.Isolation and characterization of melanin from Osmanthus fragrans’ seeds.LWT-Food Science and Technology, 2006, 39(5): 496-502.

[13] HONG L, SIMON J D.Physical and chemical characterization of iris and choroid melanosomes isolated from newborn and mature cows.Photochemistry and Photobiology, 2005, 81(3): 517-523.

[14] TU Y G, SUN Y Z, TIAN Y G, XIE M Y, CHEN J.Physicochemical characterisation and antioxidant activity of melanin from the muscles of Taihe black-bone silky fowl (Gallus gallus domesticus Brisson).Food Chemistry, 2009, 114(4): 1345-1350.

[15] KORALEVA O V, KULIKOVA N A, ALEKSEEVA T N, STEPANOVA E V, TSVETKOVA E A.A comparative characterization of fungal melanin and the humin-like substances synthesized by Cerrena maxima 0275.Applied Biochemistry and Microbiology, 2007, 43(1):61-67.

[16] WU Y, SHAN L J, YANG S X, MA A M.Identification and antioxidant activity of melanin isolated from Hypoxylon archeri, a companion fungus of Tremella fuciformis.Journal of Basic Microbiology, 2010, 48(3): 217-221.

[17] WANG L F, RHIM J W.Isolation and characterization of melanin from black garlic and sepia ink.LWT-Food Science and Technology, 2019,99: 17-23.

[18] 杨善岩, 李海龙, 王升贵, 狄志鸿, 张红, 黄哲, 张杰.黑芝麻黑色素萃取条件的响应面优化.浙江农业科学, 2013(1): 77-80.YANG S Y, LI H L, WANG S G, DI Z H, ZHANG H, HUANG Z,ZHANG J.Response surface optimization of extraction conditions of black sesame melanin.Journal of Zhejiang Agricultural Sciences,2013(1): 77-80.(in Chinese)

[19] 陈小全, 仇玉芹, 黄田, 邵辉莹, 翟虎, 周秀艳, 毕玉水.超声波作用下提取黑芝麻色素及稳定性试验.中国食品添加剂, 2009(6):114-117, 81.CHEN X Q, QIU Y Q, HUANG T, SHAO H Y, ZHAI H, ZHOU X Y,BI Y S.Study on the extraction and stability of sesame black pigment by ultrasonic wave.China Food Additives, 2009(6): 114-117, 87.(in Chinese)

[20] 武文洁, 姚培正, 王万森, 陈艳华, 常贺华.黑芝麻色素提取与性质研究.广州食品工业科技, 2002, 18(1): 32-33.WU W J, YAO P Z, WANG W S, CHEN Y H, CHANG H H.Study on extraction and stability of nature black sesame pigment.Guangzhou Food Science and Technology, 2002, 18(1): 32-33.(in Chinese)

[21] 徐利萍.黑芝麻中黑色素的萃取, 纯化及其性质的研究[D].无锡:江南大学, 2006.XU L P.Study on extraction, purification and qualities of black pigment from black sesame [D].Wuxi: Jiangnan University, 2006.(in Chinese)

[22] 康静静.黑芝麻黑色素的分离及其结构性质的研究[D].南昌: 南昌大学, 2015.KANG J J.Study of the extraction, purification, structural characteristics and physicochemical property of black pigment from Semen Sesami Nigrum [D].Nanchang: Nanchang University, 2015.(in Chinese)

[23] 白亮.黑芝麻油渣中黑色素的超临界萃取及其活性研究[D].天津:天津商业大学, 2016.BAI L.Study on melanin from black sesame dregs with superctitical extraction and its activity [D].Tianjing: Tianjin University of Commerce, 2016.(in Chinese)

[24] BAI L, CHENG X, XU Z J, WANG X G, ZHAO H, TAO Y Q,HUANG H.Black sesame pigment extract from sesame dregs by subcritical CO2: Extraction optimization, composition analysis, binding copper and antioxidant protection.LWT-Food Science and Technology,2019, 100: 28-34.

[25] 周旭章, 魏开华, 陈朝辉, 谢凯, 朱建军.从黑芝麻中提取黑色素的研究.林产化工通讯, 1997(4): 16-19.ZHOU X Z, WEI K H, CHEN C H, XIE K, ZHU J J.Study on the extraction of melanin from black sesame.Forestry Chemicals Newsletter, 1997(4): 16-19.(in Chinese)

[26] 刘元法, 徐丽萍, 王兴国.黑芝麻色素的光谱吸收特点及其FT-IR分析.中国粮油学报, 2006, 21(3): 304-306.LIU Y F, XU L P, WANG X G.Adsorption characterization and FT-IR analysis of melanin in black sesame.Journal of the Chinese Cereals and Oils Association, 2006, 21(3): 304-306.(in Chinese)

[27] 王岩, 刘学惠, 陆懋荪, 尹佩玉, 容蓉.几种天然黑色素分子结构的红外光谱表征研究.分析试验室, 1996, 15(6): 63-65.WANG Y, LIU X H, LU M S, YIN P Y, RONG R.Study on the structure of several natural melanin by FTIR spectrometer.Analysis Laboratory, 1996, 15(6): 63-65.(in Chinese)

[28] 陆懋荪, 尹佩玉, 容蓉, 孔庆山, 李淑芹, 纪克红.黑芝麻黑色素的化学结构研究.食品科学, 2007, 28(11): 91-94.LU M S, YIN P Y, RONG R, KONG Q S, LI S Q, JI K H.Study on sesame melanin structure characteristics.Food Science, 2007, 28(11):91-94.(in Chinese)

[29] 尹佩玉, 陆懋荪, 孔庆山, 容蓉, 刘钢.气相色谱/质谱法鉴定黑芝麻中黑色素的结构类型.色谱, 2001, 19(3): 268-269.YIN P Y, LU M S, KONG Q S, RONG R, LIU G.Structure characterization of melanin in black sesame by GC/MS.Chinese Journal of Chromatography, 2001, 19(3): 268-269.(in Chinese)

[30] CHU M Q, HAI W X, ZHANG Z Y, WO F J, WU Q, ZHANG Z F,SHAO Y X, ZHANG D, JIN L, SHI D L.Melanin nanoparticles derived from a homology of medicine and food for sentinel lymph node mapping and photothermal in vivo cancer therapy.Biomaterials,2016, 91: 182-199.

[31] USACH I, TALÉNS-VISCONTI R, MAGRANER-PARDO L, PERIS J E.Hesperetin induces melanin production in adult human epidermal melanocytes.Food and Chemical Toxicology, 2015, 80: 80-84.

[32] DUFF G A, ROBERTS J E, FOSTER N.Analysis of the structure of synthetic and natural melanins by solid-phase NMR.Biochemistry,1988, 27(18): 7112-7116.

[33] XIAO M, CHEN W, LI W Y, ZHAO J Z, HONG Y L, NISHIYAMA Y,MIYOSHI T, SHAWKEY M D, DHINOJWALA A.Elucidation of the hierarchical structure of natural eumelanins.Journal of The Royal Society Interface, 2018, 15(140): 1-10.

[34] YAO Z Y, QI J H, WANG L H, YAO Z Y.Isolation, fractionation and characterization of melanin-like pigments from chestnut (Castanea mollissima) shells.Journal of Food Science, 2012, 77(6): 671-676.

[35] CASADEVALL A, NAKOUZI A, CRIPPA P R, EISNER M.Fungal melanins differ in planar stacking distances.PLoS ONE, 2012, 7(2):1-6.

[36] PĺO-LEÓN J F, MONTES-AVILA J, LÓPEZ-ANGULO G, DĺAZCAMACHO S P, VEGA-RIOS A, LÓPEZ-VALENZUELA J Á,DELGADO-VARGAS F.Melanins of Vitex mollis fruit with differences in water-solubility show high inhibition of carbohydrate digestive enzymes and antioxidant activity.Journal of Food Biochemistry, 2018, 42(3): 1-10.

[37] 董丽红, 张瑞芬, 肖娟, 邓媛媛, 张雁, 刘磊, 黄菲, 张名位.荔枝果肉不同酚类成分群的分离及其抗氧化活性.中国农业科学, 2016,49(20): 4004-4015.DONG L H, ZHANG R F, XIAO J, DENG Y Y, ZHANG Y, LIU L,HUANG F, ZHANG M W.Separation and antioxidant activity of different phenolic groups from litchi fruit.Scientia Agricultura Sinica,2016, 49(20): 4004-4015.(in Chinese)

[38] ZHANG R F, ZHANG F X, ZHANG M W,WEI Z C, YANG C Y,ZHANG Y, TANG X J, DENG Y Y, CHI J W.Phenolic composition and antioxidant activity in seed coats of 60 Chinese black soybean(Glycine max L.Merr.) varieties.Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2011, 59(11): 5935-5944.

[39] BRONZE-UHLE E S, BATADIN-NETO A, XAVIER P H P,FERNANDES N I, AZEVEDO E R, GRAEFF C F O.Synthesis and characterization of melanin in DMSO.Journal of Molecular Structure,2013, 1047: 102-108.

[40] 宋茹, 李厚宝, 邓尚贵.鱿鱼墨黑色素酶解法提取工艺优化及其紫外, 红外光谱特征分析.食品科学, 2011, 32(18): 63-67.SONG R, LI H B, DENG S G.Optimization of enzymatic preparation of natural melanin from squid ink and its spectral characterization.Food Science, 2011, 32(18): 63-67.(in Chinese)

[41] 李兴旺, 王慥, 蒋霞云.从鱿鱼墨中精制黑色素.上海水产大学学报, 2001, 10(3): 252-256.LI X W, WANG Z, JIANG X Y.The purification of melanin extracted from squid ink.Journal of Shanghai Fisheries University,2001, 10(3): 252-256.(in Chinese)

[42] ITO S, FUJITA K.Microanalysis of eumelanin and pheomelanin in hair and melanomas by chemical degradation and liquid chromatography.Analytical Biochemistry, 1985, 144(2): 527-536.

[43] KAMEI H, KOIDE T, KOJIMA T, HASEGAWA M, UMEDA T.Suppression of growth of cultured malignant cells by allomelanins,plant-produced melanins.Cancer Biother Radiopharm, 1997, 12(1):47-49.

[44] KATRITZKY A R, AKHMEDOY N G, DENISENKO S N,DENISKO O V.1H NMR Spectroscopic characterization of solutions of sepia melanin, sepia melanin free acid and human hair melanin.Pigment Cell Research, 2002, 15(2): 93-97.

[45] ADHYARU B B, AKHMEDOV N G, KATRITZKY A R, BOWERS C R.Solid-state cross-polarization magic angle spinning 13C and 15N NMR characterization of sepia melanin, sepia melanin free acid and human hair melanin in comparison with several model compounds.Magnetic Resonance in Chemistry, 2003, 41(6): 466-474.

[46] DING Y H, WENG L T, YANG M, YANG Z L, LU X, HUANG N,LENG Y.Insights into the aggregation/deposition and structure of a polydopamine film.Langmuir: the ACS journal of surfaces and colloids, 2014, 30(41): 12258-12269.

[47] BIBANG R, ARNAUD R, LEMAIRE J, DEFLANDRE A, LANG G.Electron spin resonance study of photoinduced radicals in various eumelanins in solid matrix.Pigment Cell Research, 1989, 2(5):395-400.

[48] CHENG J, MOSS S C, EISNER M, ZSCHACK P.X-ray characterization of melanins--II.Pigment Cell Research, 1994, 7(4):255-262.

[49] ZECCA L, BELLEI C, COSTI P, ALBERTINI A, MONZANI E,CASELLA L, GALLORINIC M, BERGAMASCHI L, MOSCATELLID A, TURRO N J, EISNER M, CRIPPA P R, ITO S, WAKAMATSU K,BUSH W D, WARD W C, SIMON J D, ZUCCA F A.New melanic pigments in the human brain that accumulate in aging and block environmental toxic metals.Proceedings of the National Academy of Sciences, 2008, 105(45): 17567-17572.

[50] ZAJAC G W, GALLAS J M, CHENG J, EISNER M, MOSS S C.The fundamental unit of synthetic melanin: A verification by tunneling microscopy of X-ray scattering results.Biochimica et Biophysica Acta,1994, 1199(3): 271-278.

[51] SHUMOY H, GABAZA M, VANDEVELDE J, RAES K.Soluble and bound phenolic contents and antioxidant capacity of tefinjera as affected by traditional fermentation.Journal of Food Composition and Analysis, 2017, 58: 52-59.

[52] DUDONNÉ S, VITRAC X, COUTIÈRE P, WOILLEZ M,MÉRILLON J M.Comparative study of antioxidant properties and total phenolic content of 30 plant extracts of industrial interest using DPPH, ABTS, FRAP, SOD and ORAC assays.Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2009, 57(5): 1768-1774.

[53] 续洁琨, 姚新生, 栗原博.抗氧化能力指数(ORAC)测定原理及应用.中国药理学通报, 2006, 22(8): 1015-1021.XU J K, YAO X S, LI Y B.Oxygen radical absorbance capacity assay and its application.Chinese Pharmacological Bulletin, 2006, 22(8):1015-1021.(in Chinese)

[54] JACOBSAN E S, TINNELL S B.Antioxidant function of fungal melanin.Journal of Bacteriology, 1993, 175(21): 7102-7104.

[55] 金春英, 张小勇, 崔胜云.DPPH及邻苯三酚法对牛蒡和小根蒜提取液及其他抗氧剂的清除自由基能力的比较研究.延边大学学报(自然科学版), 2008, 34(1): 43-46.JIN C Y, ZHANG X Y, CUI S Y.Comparison of antioxidant properties of extracts from Arctum lappa L, Allium macrostemon Bunge and other antioxidants.Journal of Yanbian University (Natural Science Edition), 2008, 34(1): 43-46.(in Chinese)

[56] VATE N K, BENTAKIL S.Antioxidative activity of melanin-free ink from splendid squid (Loligo formosana).International Aquatic Research, 2013, 5(1): 1-12.

Isolation, Structural Characterization and Antioxidant Activity of Black Sesame Melanin

LI Jie1,2, JIA XuChao2, ZHANG RuiFen2, LIU Lei2, CHI JianWei2, HUANG Fei2,DONG LiHong2, ZHANG MingWei1,2
(1College of Food Science, Fujian Agriculture and Forestry University, Fuzhou 350000; 2Sericultural and Agri-Food Research Institute, Guangdong Academy of Agricultural Sciences/Key Laboratory of Functional Foods, Ministry of Agriculture and Rural Affairs/Guangdong Key Laboratory of Agricultural Products Processing, Guangzhou 510610)

Abstract:【Objective】In order to provide more knowledge about the chemical structure and biological activity of black sesame melanin, black sesame melanin extract was isolated, and the structure of obtained fractions was elucidated by multiple spectroscopic methods.The in vitro antioxidant activity of obtained fractions was also evaluated.【Method】Melanin was extracted from black sesame hull by the methods of alkali extraction and acid precipitation.Crude black sesame melanin extract was then isolated by HW-40C size exclusion column, and the yields, color value and melanin content of obtained fractions were determined.The structure of each fraction was studied by extensive spectroscopic methods, including UV-Vis, elemental analysis (EA), fourier transform infrared spectroscopy (FT-TR), nuclear magnetic resonance spectroscopy (1H and 13C), X-ray photoelectron spectroscopy (XPS),electron paramagnetic resonance (EPR), and X-ray diffraction (XRD).Four methods, including 1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl(DPPH) radical scavenging assay, 2,2'-azino-bis (3-ethylbenzthiazoline-6-sulphonic acid) (ABTS) radical scavenging assay, ferric reducing antioxidant power (FRAP) and oxygen radical absorbance capacity (ORAC) assay, were used to evaluate the in vitro antioxidant activity of each fraction of black sesame melanin.【Result】Black Fr1 and brown Fr2 were isolated from black sesame melanin extract, with the yields of 60% and 24%, respectively; the molecular weights of these two fractions were 38 800 Da and 6 000 Da, respectively, and the melanin content of two fractions was 782.16 mg SME·g-1 DW and 884.66 mg SME·g-1 DW,respectively.Elemental analysis showed that Fr1 was eumelanin and Fr2 might be allomelanin.The UV-visible and infrared spectrum of Fr1 and Fr2 demonstrated that there were functional groups such as benzene ring, -OH, -NH2, -COOH and nitrogen heterocycle in the structure of both fractions.The results of 1H-NMR indicated that Fr1 possessed more aliphatic hydrogen and substituted aromatic ring compared with Fr2.13C-NMR spectrum indicated that there were more aliphatic carbon and carbonyl and less aromatic carbon in Fr1 compared with Fr2.The results of XPS showed that the content of functional groups of two fractions was different, C1s spectra indicated that the ratio of C-C(H) and C=O group of Fr1 was higher than that of Fr2, but the ratio of C-OH/C-N and O-C=O was lower than that of Fr2.N1s spectra showed that the ratio of C-NH of Fr1 was higher than that of Fr2, the ratio of aromatic N was lower than that of Fr2, and there was no C-NH3+ in Fr1.O1s spectra indicated that the ratio of C-OH of Fr1 was higher than that of Fr2, but the ratio of C=O of Fr1 was slightly lower than that of Fr2, and there was no absorbed H2O in Fr1.The results of EPR showed that these two fractions demonstrated strong paramagnetic resonance properties, the g values of Fr1 and Fr2 were 2.0078 and 2.0085, respectively, and the ΔHpp of Fr1 and Fr2 were 0.7430 and 0.6950 mT, respectively.The results of X-ray diffraction showed that both fractions of black sesame melanin were amorphous compounds, and there was a planar stack structure in Fr1.The IC50 values of DPPH free radical scavenging of Fr1 and Fr2 were 83.00 and 54.00 μg·mL-1, respectively.The IC50 values of ABTS free radical scavenging of Fr1 and Fr2 were 53.00 and 30.00 μg·mL-1, respectively.The FRAP values of Fr1 and Fr2 were 1.05 and 1.62 mmol FeE·g-1 DW, respectively.The ORAC values of Fr1 and Fr2 were 3 141.80 and 4 143.76 μmol TE·g-1 DW, respectively.【Conclusion】Above results indicated that Fr1 was the main fraction of black sesame melanin, and spectroscopic analysis indicated that Fr1 was eumelanin and Fr2 might be allomelanin.Functional groups, such as carbonyl, hydroxyl, amino, aromatic ring and nitrogen heterocycle, existed in both fractions, and the aromaticity of Fr2 was higher than that of Fr1.The DDPH and ABTS free radical scavenging ability, and FRAP and ORAC antioxidant capacity of Fr2 were higher than that of Fr1.

Key words: black sesame; melanin; purification; structural characterization; antioxidant activity



奥鹏易百网www.openhelp100.com专业提供网络教育各高校作业资源。
您需要登录后才可以回帖 登录 | 立即注册

本版积分规则

QQ|Archiver|手机版|小黑屋|www.openhelp100.com ( 冀ICP备19026749号-1 )

GMT+8, 2024-11-24 17:33

Powered by openhelp100 X3.5

Copyright © 2001-2024 5u.studio.

快速回复 返回顶部 返回列表