奥鹏易百

 找回密码
 立即注册

扫一扫,访问微社区

QQ登录

只需一步,快速开始

查看: 326|回复: 0

桦木酸对T-2毒素致小鼠肠道氧化损伤的保护作用

[复制链接]

2万

主题

27

回帖

6万

积分

管理员

积分
60146
发表于 2021-2-21 19:22:26 | 显示全部楼层 |阅读模式
扫码加微信
桦木酸对T-2毒素致小鼠肠道氧化损伤的保护作用桦木酸对T-2毒素致小鼠肠道氧化损伤的保护作用
黄城龙1,朱利娟1,易想炼1,黄 琳1,欧朝萍1,马玉容1,邬 静1,2,3,李荣芳1,2,3,*,易金娥1,2,3,*
(1.湖南农业大学动物医学院,湖南 长沙 410128;2.湖南畜禽安全生产协同创新中心,湖南 长沙 410128;3.畜禽保健湖南省工程研究中心,湖南 长沙 410128)
摘 要:采用腹腔注射T-2毒素诱导小鼠肠道氧化损伤模型,研究桦木酸(betulinic acid,BA)对肠道氧化损伤的保护作用。60 只健康雄性KM小鼠随机6 组,分别为对照组,T-2毒素组,BA低、中、高剂量(0.25、0.5、1 mg/kg mb)+T-2毒素组,VE+T-2毒素组。BA连续灌胃14 d后,检测血清中免疫球蛋白(immunoglobulin,Ig)G、IgM和二胺氧化酶(diamine oxidase,DAO)活性,十二指肠、空肠和回肠等小肠组织中过氧化氢酶(catalase,CAT)和谷胱甘肽过氧化物酶(glutathione peroxidase,GSH-Px)活性,以及谷胱甘肽(glutathione,GSH)和丙二醛(malondialdehyde,MDA)含量的变化,苏木精-伊红染色观察空肠形态结构的改变,探究BA对肠道氧化损伤的保护作用。结果表明:BA预处理能提高血清IgM、IgG水平,降低血清DAO活性,提高十二指肠、空肠和回肠中CAT和GSH-Px活性,升高GSH水平,降低MDA含量,缓解T-2毒素诱导的肠黏膜结构的损坏。结论:BA通过提高机体的体液免疫能力、增强肠黏膜屏障功能和提高肠道抗氧化损伤的能力,改善肠道结构的完整性,对T-2毒素引起的小鼠肠黏膜氧化损伤具有预防性的保护作用。
关键词:桦木酸;T-2毒素;肠黏膜;氧化损伤
真菌毒素是由真菌产生的次生代谢产物,目前已确认的约有300多种霉菌代谢产物仅对人和动物有毒[1]。据估计,全球约25%的农产品在一定程度上受到霉菌毒素的污染[2],而单端孢霉烯族毒素是农业上对全球健康构成潜在危害的最重要的真菌毒素之一[1]。早在1973年联合国粮食及农业组织/世界卫生组织就将单端孢霉烯族毒素列为最危险的天然存在的食品污染毒物之一。单端孢霉烯族真菌毒素从结构上可分为A、B、C、D 4 种类型[3],B类最常见,且结构复杂,通常称为大环单族毒素。而A类结构比较简单,为非大环类,通常由镰孢菌产生。在动物体内,A类单端孢霉烯族真菌毒素的毒性为B类的10~100 倍,而T-2毒素属于A类单端孢霉烯族,是此类毒素中急性毒性最强的毒素[4]。T-2毒素广泛分布在小麦、大麦、燕麦、玉米、谷物以及动物饲料中,其性质稳定,难以清除,对机体免疫系统、消化系统、神经系统等都有较强的损害作用[5-6]。研究报道,T-2毒素能够降低肠上皮细胞的存活率[7],从而损害肠道屏障,造成动物和人类的肠道疾病[8]。近年来大量研究表明,机体产生氧化应激是T-2毒素毒性作用发挥的基本机制之一[9]。据报道,4.8 mg/kg mb T-2毒素能诱导虾明显的氧化损伤[10],4 mg/kg mb T-2毒素能广泛引起大鼠肝脏、脾脏、胸腺和胃组织氧化损伤[11]。
氧化损伤与许多人类疾病密切相关。事实上,许多疾病的病理基础都是氧化损伤[12]。在所有完全分化的器官中,由于肠细胞更新频繁,不断暴露于外源性物质中,肠组织比其他器官更容易受到氧化损伤[13]。越来越多的证据表明,各种肠道疾病,甚至它们的致病因素,都与氧化损伤有关。因此,寻找一种天然有效的抗氧化剂,对于维护肠道健康和预防疾病的发生具有重要意义。
桦木酸(betulinic acid,BA)是一种来源于羽扇豆的三萜化合物,广泛存在于食品、水果、蔬菜和植物中。BA是一种具有多种生物学活性的天然活性物质,如抗氧化应激、抗炎、提高机体免疫力、抗肿瘤、抗疟疾以及抗艾滋病毒等。本课题组对BA的免疫调控和抗氧化作用开展了大量的研究工作,发现BA能够缓解酒精性肝损伤[3],调控地塞米松诱导的淋巴细胞凋亡[14],减轻环磷酰胺造成的肠道氧化损伤[15],这些保护作用都与BA的抗氧化能力有关。那么,对于霉菌毒素造成的肠道氧化损伤,BA是否同样具有预防性保护作用?对此目前鲜有报道。因此,本实验通过给小鼠进行T-2毒素攻毒建立肠道氧化损伤模型,研究BA对机体的体液免疫、肠道黏膜屏障功能以及抗氧化能力的影响,为BA的抗氧化作用以及功能性食品开发提供理论依据。
1 材料与方法1.1 动物、材料与试剂
SPF级雄性KM小鼠60 只,体质量(20±2)g,4~5 周,购于湖南斯莱克景达实验动物公司(生产许可证号SCXK(湘)2009-0004),使用M02小鼠普通饲料饲喂。
T-2毒素 新加坡Pribolab公司;BA 美国Sigma公司;苏木精-伊红(hematoxylin-eosin,H&E)染色液 武汉谷歌生物科技有限公司;免疫球蛋白(immunoglobulin,Ig)G、IgM、二胺氧化酶(diamine oxidase,DAO)酶联免疫吸附测定(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)试剂盒武汉华美生物科技有限公司;BCA蛋白浓度测定试剂盒、过氧化氢酶(catalase,CAT)试剂盒、谷胱甘肽过氧化物酶(glutathione peroxidase,GSH-Px)试剂盒、谷胱甘肽(glutathione,GSH)试剂盒、丙二醛(malondialdehyde,MDA)试剂盒 南京建成生物工程研究所。
1.2 仪器与设备
JXFSTPRP-24全自动样品快速研磨仪 上海净信实业发展有限公司;Infinite 200 PRO多功能酶标仪美国BioTek公司;AFX1-0501-P超纯水仪 台湾艾科浦公司;5404EQ220531高速冷冻离心机 德国Eppendorf公司;超薄切片机 德国Leica公司;U410-86 超低温冰箱 英国New Brunswick Scientific公司;AY220电子天平 日本岛津有限公司。
虽然在20世纪七八十年代,港台地区仍保持着华语流行音乐的中心地位,但期间大陆的流行音乐也在持续探索、发展。20世纪80年代起,在港台流行音乐的刺激下,大陆华语流行音乐开始迅速发展。根据统计,21世纪以来,大陆歌手在北京举办个人演唱会的数量开始与台湾歌手平分秋色。自2011年起至2015年,除2013年外,大陆歌手在北京举办个人演唱会的数量开始超过台湾地区的歌手,居于所统计歌手群体的首位。(表3)
1.3 方法
1.3.1 小鼠分组与给药
BA和T-2毒素的剂量根据前期研究以及预实验来确定[3,14],VE作为阳性对照组[16]。将健康雄性KM小鼠置于室温(22~25 ℃)、相对湿度为50%~70%的动物饲养室中适应性饲养1 周后,随机分为6 组(n=10),分别为对照组,T-2毒素组,BA低、中、高剂量组(0.25、0.5、1 mg/kg mb BA+T-2毒素),VE组(100 mg/kg mb VE+T-2毒素)。将BA与VE混悬于质量分数1%的可溶性淀粉中进行灌胃,1 次/d,连续灌胃14 d,对照组和T-2毒素组灌服可溶性淀粉。最后一次灌胃10 h后,除空白对照组注射等量乙醇+磷酸盐缓冲液混合液外,其余各组将T-2毒素溶于磷酸盐缓冲液与乙醇溶液,腹腔注射4 mg/kg mb T-2毒素,建立肠道氧化损伤模型。
1.3.2 样本采集与相关指标检测
小鼠自由饮水,禁食15 h后,眼球采血,3 000 r/min离心15 min,收集血清,用ELISA法检测IgG、IgM、DAO水平;取小肠组织(十二指肠、空肠和回肠)于生理盐水中轻轻晃动除净肠道内容物,其中将一部分空肠固定于福尔马林中,用于H & E染色观察肠道形态结构的改变,剩余十二指肠、空肠和回肠部分制成10%组织匀浆液,3 000 r/min离心15 min,收集上清液,按照试剂盒说明书检测CAT、GSH-Px、MDA、GSH等氧化指标水平和各组织蛋白浓度。
作为欧洲化学公司深入中国市场的前沿,欧化农业贸易(深圳)有限公司在中国开拓新的钾肥贸易渠道的突破上一直不遗余力。丁振军介绍,“目前公司红粉、红颗粒、白粉、白色结晶等产品都将随着产能的释放陆续问世,此后如何进军国内市场,公司一直在尝试开拓新的渠道。”国际贸易是中国化肥行业发展的必然,中国化肥企业在国内市场竞争激烈的情况下,正在全球各个地区通过各种方式探寻“走出去”之路,同时也极力寻求新技术、优质资源“走进来”。“通过多元化产品释放钾也是公司目前在进行的工作。”
推荐理由:咖啡为什么会成为时尚之选?互联网革命是如何从一只坏掉的激光笔开始的?企业的基石是哪些?商业领域为什么会存在垄断?我们的GDP是怎么核算出来的?从经济环境到企业管理,从个人消费到国际金融,涵盖了经济的方方面面。在这本书中用简单的图表和丰富的案例帮助读者了解一个真实的经济世界。2017年诺贝尔经济学奖得主理查德·塞勒倾情推荐《认识经济》,让你做出更好的商业和个人决策。
1.4 数据分析与处理
所测数据采用SPSS 22.0软件进行统计分析,数据分析采用单因素方差法,两两比较采用q检验,结果以平均值±标准差表示,P<0.05为差异显著,P<0.01为差异极显著。
2 结果与分析2.1 BA对T-2毒素致小鼠血清IgG和IgM水平的影响
机体的免疫系统对维持机体的健康至关重要。IgG是机体体液免疫的重要指标,具有抗菌和中和病毒的作用。在原发性免疫应答中,大多数Ig属于IgM类,在宿主对抗病原体的前线防御中起着至关重要的作用[17]。它们能引起可溶性抗原的沉积,从而提高免疫系统通过吞噬作用消除抗原的能力,保护机体免受感染和损伤。
     
图1 BA对T-2毒素致小鼠血清IgG(A)和IgM(B)水平的影响
Fig. 1 Effect of BA on IgG (A) and IgM (B) levels in serum of mice treated with T-2 toxin

如图1所示,与对照组相比,T-2毒素降低了小鼠血清中IgM质量浓度(P>0.05);与T-2毒素组相比,中、高剂量的BA预处理显著升高了血清中IgG和IgM质量浓度(P<0.01,P<0.05);同样VE预处理显著升高血清中IgG和IgM质量浓度(P<0.05)。说明BA和VE都能够提高小鼠的机体免疫力。
粗糙集理论作为一种新型的信息处理数学工具,主要应用于已知信息不精确、不完备、不统一等场合。科学合理地将灰色系统理论和粗糙集理论进行结合,能更好地解决信息不确定、不完全处理领域的问题。粗糙集理论的重点内容是知识约简,即利用已知的决策对象、决策指标、灰色聚类结果形成一个原始决策表,考虑到元动作单元故障模式的已知数据存在不完全性并且聚类结果存在灰性(即信息不精确)的特点,若直接对所建立的原始决策表进行知识约简,那么很可能会导致极小决策算法与问题的实际意义相悖。为了优化决策算法,使决策规则更具柔性,笔者先对原始决策表进行离散化处理,然后对它进行知识约简。
影响糖尿病患者接种肺炎疫苗的因素不可患者年龄、患者文化程度、患者健康状况以及患者的肺炎疫苗认识情况;从该次研究结果可知,经宣教干预后,自愿接种肺炎疫苗率为10.40%,了解肺炎疫苗率为71.10%(711/1 000),疫苗能预防肺炎率为 70.30%(703/1 000),愿意接种率为52.40%(524/1 000)。临床还需加强给予医护人员的疾病知识培训、接种肺炎疫苗知识培训等,以持续性提升医护人员的业务素质[4-5]。
2.2 BA对T-2毒素致小鼠血清DAO活力的影响     
图2 BA对T-2毒素致小鼠血清DAO活力的影响
Fig. 2 Effect of BA on DAO activity in serum of mice treated with T-2 toxin

DAO是由小肠上皮细胞产生的一种胞内酶,血清DAO的水平与肠屏障损伤和修复密切相关[18-20]。如图2所示,与对照组相比,T-2毒素升高了血清中DAO活力(P>0.05)。与T-2毒素组相比,各剂量组BA均降低了血清DAO的活力,其中高剂量组差异极显著(P<0.01);VE组预处理后极显著降低了血清中DAO的活力(P<0.01)。这说明了BA和VE都能够改善小鼠肠道的屏障功能。
2.3 BA对T-2毒素致小肠CAT活力的影响
CAT是机体抵抗氧化应激的第一道防线,能够催化无机过氧化物H2O2发生水解,从而保护机体不被自由基侵害。由图3可知,与对照组相比,T-2毒素组显著或极显著降低十二指肠、空肠和回肠CAT活性(P<0.01,P<0.05);与T-2毒素组相比,BA各剂量组均显著或极显著增强十二指肠、空肠和回肠CAT活性(P<0.01,P<0.05),VE组能显著增强十二指肠、空肠和回肠CAT活性(P<0.05)。
   
     
图3 BA对T-2毒素致小鼠十二指肠(A)、空肠(B)和回肠(C)CAT活力的影响
Fig. 3 Effect of BA on CAT activity in duodenum (A), jejunum (B) and ileum (C) of mice treated with T-2 toxin

2.4 BA对T-2毒素致小鼠小肠GSH-Px活力的影响     
图4 BA对T-2毒素致小鼠十二指肠(A)、空肠(B)和回肠(C)GSH-Px活力的影响
Fig. 4 Effect of BA on GSH-Px activity in duodenum (A), jejunum (B)and ileum (C) of mice treated with T-2 toxin

GSH-Px是机体重要的抗氧化酶,能够保护细胞膜免受脂质过氧化。由图4可知,与对照组相比,T-2毒素组显著降低十二指肠和空肠GSH-Px活性(P<0.05);BA预处理后,极显著增强十二指肠和空肠GSH-Px活性(P<0.01),中剂量的BA极显著增强回肠GSH-Px活性(P<0.01),VE极显著升高十二指肠和空肠GSH-Px活性(P<0.01)。
2.5 BA对T-2毒素致小鼠小肠MDA含量的影响     
图5 BA对T-2毒素致小鼠十二指肠(A)、空肠(B)和回肠(C)MDA含量的影响
Fig. 5 Effect of BA on MDA contents in duodenum (A), jejunum (B)and ileum (C) of mice treated with T-2 toxin

MDA是脂质过氧化的主要终产物,被认为是氧化损伤的生物标志物。由图5可知,T-2毒素显著或极显著升高了十二指肠、空肠和回肠MDA含量(P<0.01,P<0.05);与T-2毒素组相比,BA各剂量组极显著降低十二指肠和空肠MDA含量(P<0.01),低和中剂量的BA极显著降低回肠MDA含量(P<0.01),同样,VE显著或极显著降低各肠段MDA含量(P<0.01,P<0.05)。
2.6 BA对T-2毒素致小肠GSH含量的影响
GSH作为GSH-Px的辅助因子,在机体抗氧化防御系统中同样发挥着重要作用。由图6可知,与对照组相比,T-2毒素组极显著降低了空肠GSH含量(P<0.01);与T-2毒素组相比,BA各组能提高各肠段GSH水平,以空肠差异极显著(P<0.01),VE也能极显著提高空肠GSH含量(P<0.01)。
玉敏睡不着,像上了岸的鱼,在床上活蹦乱跳的,最后竟跳到了小虫身上。小虫睡得正香呢,被玉敏挑弄了几下,酒劲上来了,一翻身将玉敏压到了身下。小虫在玉敏身上忙活了一阵,把玉敏折腾得筋疲力尽。玉敏经了这番折腾,才老老实实地睡了。
空洞-绕开最短路径HBSP(Hole-Bypassing Shortest Path):令(s,t)表示空洞凸包H外的两个节点,且s与t间连线贯穿H,如图2(b)所示。令Hs1、Hs2、Ht1、Ht2分别表示s、t的VLV节点,且Hs1和Hs2在矢量st的右边,而Ht1、Ht2在在矢量st的左边。s与t间的HBSP就是和间的最小值。
     
图6 BA对T-2毒素致小鼠十二指肠(A)、空肠(B)和回肠(C)GSH含量的影响
Fig. 6 Effect of BA on GSH contents in duodenum (A), jejunum (B)and ileum (C) of mice treated with T-2 toxin

2.7 BA对T-2毒素致小鼠空肠形态的影响     
图7 H & E染色观察BA对T-2毒素致小鼠空肠形态结构的影响(100×)
Fig. 7 Effect of BA on intestinal morphological structure in mice treated with T-2 toxin evaluated by H & E staining (100 ×)

如图7所示,对照组小鼠肠绒毛形态结构正常(图7A);T-2毒素引起肠绒毛排列不整齐,肠绒毛变短,不同程度断裂或溶解,肠绒毛间松散,隐窝加深等现象(图7B);BA预处理后,能改善肠绒毛的形态结构,肠绒毛相对较长,排列较规则,绒毛间隙相对较紧凑(图7C~E),VE预处理同样改善肠绒毛形态结构(图7F)。
3 讨 论
肠道的健康对于机体的健康至关重要,食物的摄取和消化、营养物质的吸收都要通过肠道组织,又因为肠道使机体与外界直接相接触,极其容易受到微生物的侵染,所以肠道也是机体最易发生氧化损伤的场所之一。血清免疫球蛋白能通过与抗原结合达到清除病原体、中和毒素和增强超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)活性而发挥抗衰老作用,是免疫系统的重要组成部分,其含量一定程度上反映了机体免疫功能的强弱[21]。血清中IgA、IgG和IgM是免疫反应中常见的免疫球蛋白,是机体体液免疫的分子基础,发挥着特异性免疫作用,起着免疫防护作用。IgG是人体内含量最多的免疫球蛋白,是免疫的主力军,IgM不能通过血管壁,多存在于血液中,是初次免疫应答反应中出现最早的抗体,被称为免疫反应的先头部队[22]。当机体受到外界抗原物质刺激时,机体会产生大量的免疫球蛋白,如IgG、IgM、IgA等,迅速招募具有吞噬功能的先天性免疫细胞(粒细胞、单核细胞),激活炎症反应,保护机体免受损伤[23-24]。大量研究证明,T-2毒素广泛分布于自然界中,与人类日常生活密切相关,对人类和动物健康有很大潜在危害性,特别是在消化系统、神经系统和生殖系统方面危害性极大[25]。在本研究中,T-2毒素处理后,小鼠血清中IgM水平下降;而BA预处理后,中、高剂量组均显著提高了血清IgG、IgM水平,这表明BA可能通过提高机体体液免疫能力来保护肠道的健康。DAO是一种细胞内酶,在小肠绒毛顶端的肠细胞中尤为丰富,故其在小肠中活性最高。而在正常机体血清中其活性都很低,当肠黏膜细胞坏死或肠黏膜屏障功能衰竭时,会造成肠绒毛损伤脱落,从而进入血液中,使其在血液中的活性升高。因此,血液中DAO的活性变化能够很好地反映肠道黏膜的损伤程度[26]。本实验中,T-2毒素组血清中DAO活性的变化差异不显著,但表现出升高的趋势。结合肠道组织病理学结构的结果发现,在T-2造模组引起肠绒毛排列不整齐,肠绒毛变短,不同程度断裂或溶解,肠绒毛间松散,隐窝加深等现象,这也进一步验证T-2毒素在一定程度上破坏了肠黏膜的完整性,造成肠道黏膜损伤,肠绒毛断裂,进而诱发肠道黏膜屏障功能障碍。而BA预处理后能改善肠绒毛的形态结构,缓解肠绒毛缩短,使其恢复规则的排列,同时BA还能提高T-2诱导小鼠血清中DAO的活性,其中BA高剂量组差异极显著。这说明BA可缓解T-2诱导肠黏膜结构的破坏,有效地降低肠黏膜的通透性,具有预防性保护肠道黏膜损伤,增强肠道屏障功能的作用。
在正常的生理状态下,动物体内的抗氧化防御和促氧化作用处于动态平衡状态。如果失衡会导致活性氧(reactive oxygen species,ROS)和自由基含量的升高,引起氧化应激[27-28]。当体内ROS和自由基的产生超过了肠道组织的抗氧化防御系统的能力就会造成肠道组织氧化损伤,导致蛋白质修饰和脂质过氧化,进而引起肠道组织功能障碍和疾病的产生[29]。因此,机体只有通过加强合成抗氧化酶和修复生理系统来应对氧化应激。正常肠黏膜具有高效的抗氧化防御系统,包括SOD、CAT和GSH-Px等酶,以及GSH和金属硫蛋白等非酶类小分子[30]。SOD通过催化超氧阴离子生成过氧化氢(H2O2);CAT和GSH-Px具有及时消除歧化反应产生的自由基,分解其他过氧化物的作用,能够将H2O2转化成水。GSH为衡量氧化应激标志性指标,对机体抗氧化能力同样发挥着重要作用[31]。当机体受到环境毒素的侵害,处于氧化应激状态时,CAT和GSH-Px的酶活性会降低,GSH含量会减少,MDA含量会升高[32-34]。Chaudhari等[10]报道T-2毒素可以刺激细胞产生大量的ROS,从而诱发氧化应激,造成细胞损伤。本研究结果与其一致,在T-2毒素作用下,小鼠小肠各肠段(十二指肠、空肠和回肠)的CAT、GSH-Px活性均下降,GSH含量均减少,MDA含量均升高,这说明T-2毒素诱发小鼠肠道发生脂质过氧化,产生了氧化应激反应,肠道氧化损伤模型构建成功。本实验用BA进行预处理,能够缓解T-2毒素引起的肠道CAT、GSH-Px等抗氧化酶活性的下降,提高肠道GSH水平,降低MDA含量,这说明BA通过提高肠道抗氧化能力对肠道氧化损伤起到预防性保护作用。这与前期研究结果一致,BA通过提高机体抗氧化能力减缓地塞米松或环磷酰胺致淋巴细胞氧化损伤[14-15,32-33]。本实验中还发现,BA对十二指肠、空肠和回肠3个肠段的氧化损伤具有保护作用,其中BA预处理恢复空肠抗氧化防御和促氧化作用系统的平衡较为明显,这可能与空肠的结构和功能有关,空肠是小肠中最长的一段,空肠各种消化酶活性均较高,是营养物质消化的主要部位,而影响消化酶活性的物质也影响抗氧化指标[35-36],所以BA可能有选择性地提高空肠抗氧化酶的活性,降低MDA的含量。具体机制需要进一步探究。
4 结 论
BA可以通过提高小鼠血清IgG、IgM水平,提高机体体液免疫功能,通过减少血清DAO活性,缓解肠道结构的破坏,从而增强肠黏膜屏障功能,同时通过提高小肠各肠段的CAT、GSH-Px、GSH水平、降低MDA含量来提高肠道抗氧化能力,对T-2毒素引起的小鼠肠黏膜氧化损伤起到预防性的保护作用。
参考文献:
[1] ADHIKARI M, NEGI B, KAUSHIK N, et al. T-2 mycotoxin:toxicological effects and decontamination strategies[J]. Oncotarget,2017, 8(20): 33933-33952. DOI:10.18632/oncotarget.15422.
[2] MARIN S, RAMOS A J, CANO-SANCHO G, et al. Mycotoxins:occurrence, toxicology, and exposure assessment[J]. Food and Chemical Toxicology, 2013, 60: 218-237. DOI:10.1016/j.fct.2013.07.047.
[3] YI J N, XIA W, WU J P, et al. Betulinic acid prevents alcohol-induced liver damage by improving the antioxidant system in mice[J]. Journal of Veterinary Science, 2014, 15(1): 141-148.
[4] ZHENG Z W, SONG S Z, WU Y L, et al. Betulinic acid prevention of D-galactosamine/lipopolysaccharide liver toxicity is triggered by activation of Bcl-2 and antioxidant mechanisms[J]. Journal of Pharmacy and Pharmacology, 2011, 63(4): 572-578. DOI:10.1111/j.2042-7158.2010.01239.x.
[5] PU G, LIU A M, HUANG D Y, et al. Brain damage and neurological symptoms induced by T-2 toxin in rat brain[J]. Toxicology Letters,2018, 286: 96-107. DOI:10.1016/j.toxlet.2018.01.012.
[6] KONIGS M, MULAC D, SCHWERDT G, et al. Metabolism and cytotoxic effects of T-2 toxin and its metabolites on human cells in primary culture[J]. Toxicology, 2009, 258(2/3): 106-115. DOI:10.1016/j.tox.2009.01.012.
[7] GOOSSENS J, PASMANS F, VERBRUGGHE E, et al. Porcine intestinal epithelial barrier disruption by the Fusarium mycotoxins deoxynivalenol and T-2 toxin promotes transepithelial passage of doxycycline and paromomycin[J]. BMC Veterinary Research, 2012, 8:245. DOI:10.1186/1746-6148-8-245.
[8] 高亚男, 王加启, 李松励, 等. 霉菌毒素影响肠道黏膜屏障功能[J].动物营养学报, 2016, 28(3): 674-679. DOI:10.3969/j.issn.1006-267x.2016.03.006.
[9] ZHANG X Y, WANG Y, VELKOV T, et al. T-2 toxin-induced toxicity in neuroblastoma-2a cells involves the generation of reactive oxygen,mitochondrial dysfunction and inhibition of Nrf2/HO-1 pathway[J].Food and Chemical Toxicology, 2018, 114: 88-97. DOI:10.1016/j.fct.2018.02.010.
[10] CHAUDHARI M, JAYARAJ R, BHASKAR A S, et al. Oxidative stress induction by T-2 toxin causes DNA damage and triggers apoptosis via caspase pathway in human cervical cancer cells[J].Toxicology, 2009, 262(2): 153-161. DOI:10.1016/j.tox.2009.06.002.
[11] GERSCHMAN R, GILBERT D L, NYE S W, et al. Oxygen poisoning and X-irradiation: a mechanism in common[J]. Science, 1954, 119:623-626.
[12] HALLIWELL B. Oxidative stress and neurodegeneration: where are we now?[J]. Journal of Neurochemistry, 2006, 97(6): 1634-1658.
[13] MURPHY M P. Antioxidants as therapies: can we improve on nature?[J]. Free Radical Biology and Medicine, 2014, 66: 20-23.DOI:10.1016/j.freeradbiomed.
[14] ZHU L J, YI X L, ZHAO J, et al. Betulinic acid attenuates dexamethasoneinduced oxidative damage through the JNK-P38 MAPK signaling pathway in mice[J]. Biomedicine & Pharmacotherapy, 2018, 103:499-508. DOI:10.1016/j.biopha.2018.04.073.
[15] 王喜红, 朱利娟, 易想炼, 等. 桦木酸对环磷酰胺致小鼠肠道氧化损伤的影响[J]. 畜牧兽医学报, 2018, 49(4): 818-824. DOI:10.11843/j.issn.0366-6964.2018.04.020.
[16] 景波, 吕程, 李顺旭, 等. 荨麻多糖对D-半乳糖致衰老小鼠的抗衰老作用[J]. 中药材, 2015, 38(12): 2563-2567. DOI:10.13863/j.issn1001-4454.2015.12.027.
[17] OUCHIDA R, MORI H, HASE K, et al. Critical role of the IgM Fc receptor in IgM homeostasis, B-cell survival, and humoral immuneresponses[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2012, 109(40):E2699-E2706. DOI:10.1073/pnas.1210706109.
[18] FUKUDOME I, KOBAYASHI M, DABANAKA K, et al. Diamine oxidase as a marker of intestinal mucosal injury and the effect of soluble dietary fi ber on gastrointestinal tract toxicity after intravenous 5-fluorouracil treatment in rats[J]. Medical Molecular Morphology,2014, 47(2): 100-107. DOI:10.1007/s00795-013-0055-7.
[19] WANG Z E, WU D, ZHENG L W, et al. Effects of glutamine on intestinal mucus barrier after burn injury[J]. American Journal of Translational Research, 2018, 10(11): 3833-3846.
[20] WANG Y C, LIANG K, KONG W Z. Intestinal trefoil factor 3 alleviates the intestinal barrier function through reducing the expression of TLR4 in rats with nonalcoholic steatohepatitis[J]. Archives of Medical Research,2019, 50(1): 2-9. DOI:10.1016/j.arcmed.2019.03.004.
[21] 张志军, 冯霞, 蒋娟, 等. 茯苓多糖对小鼠血清IgA、IgG和IgM生物合成水平的影响[J]. 中国免疫学杂志, 2013, 29(11): 1213-1215.DOI:10.3969/j.issn.1000-484X.2013.11.020.
[22] 王文雅, 张秀敏, 杜会双, 等. 阿奇霉素对支原体肺炎患儿血清IgA、IgG、IgM水平及T淋巴细胞亚群的影响[J]. 蚌埠医学院学报, 2016, 41(2): 175-177. DOI:10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2016.02.012.
[23] WANG X, HAO G L, WANG B Y, et al. Function and dysfunction of plasma cells in intestine[J]. Cell and Bioscience, 2019, 9: 26.DOI:10.1186/s13578-019-0288-9.
[24] CERUTTI A. Immunology. IgA changes the rules of memory[J].Science, 2010, 328: 1646-1647. DOI:10.1126/science.1192488.
[25] 李丽霞, 尚书凤. T-2毒素的毒性及其作用机制与代谢研究进展[J].湖北农业科学, 2015, 54(21): 5207-5210. DOI:10.14088/j.cnki.issn 0439-8114.2015.21.002.
[26] WANG H B, LIU Y L, SHI H F, et al. Aspartate attenuates intestinal injury and inhibits TLR4 and NODS/NF-B and p38 signaling in weaned pigs after LPS challenge[J]. European Journal of Nutrition,2017, 56(4): 1433-1443. DOI:10.1007/s00394 -016-1189-x.
[27] MARROCCO I, ALLIERIE F, PELUSO I. Measurement and clinical significance of biomarkers of oxidative stress in humans[J].Oxidative Medicine and Cellular Longevity, 2017, 2017: 6501046.DOI:10.1155/2017/6501046.
[28] KATERJI M, FILIPPOVA M, DUERKSEN-HUGHES P. Approaches and methods to measure oxidative stress in clinical samples: research applications in the cancer field[J]. Oxidative Medicine and Cellular Longevity, 2019, 2019: 1279250. DOI:10.1155/2019/1279250.
[29] CAP M, VACHOVA L, PALKOVA Z. Reactive oxygen species in the signaling and adaptation of multicellular microbial communities[J].Oxidative Medicine and Cell Longevity, 2012, 2012: 976753.DOI:10.1155/2012/976753.
[30] KRUIDENIER L, KUIPER I, LAMERS C, et al. Intestinal oxidative damage in inflammatory bowel disease: semi-quantification,localization, and association with mucosal antioxidants[J]. The Journal of Pathology, 2003, 201(1): 28-36. DOI:10.1002/path.1409.
[31] 谢雅清, 梁晓美, 叶伟霞. 还原型谷胱甘肽的药理作用与临床应用研究进展[J]. 中国药业, 2013, 22(7): 124-127.
[32] 易想炼, 朱利娟, 赵静, 等. 桦木酸对环磷酰胺致小鼠免疫器官氧化损伤的保护作用[J]. 动物营养学报, 2018, 30(3): 1199-1206.DOI:10.3969/j.issn.1006-267x.2018.03.047.
[33] 朱利娟, 易想炼, 赵静, 等. 桦木酸对地塞米松致小鼠氧化应激的机制研究[J]. 动物营养学报, 2018, 30(3): 1035-1043. DOI:10.3969/j.issn.1006-267x.2018.03.028.
[34] YUAN Z, MATIAS F B, YI J, et al. T-2 toxin-induced cytotoxicity and damage on TM3 Leydig cells[J]. Comparative Biochemistry and Physiology Part C: Toxicology & Pharmacology, 2016, 181/182: 47-54. DOI:10.1016/j.cbpc.2015.12.005.
[35] 崔永华. 复方中草药添加剂对生长牛主要消化酶和血清抗氧化指标的影响研究[D]. 泰安: 山东农业大学, 2006: 10-11. DOI:10.7666/d.y903807
[36] 佟莉蓉, 黄应祥, 张栓林, 等. 犊牛胰腺和小肠消化酶变化规律的研究[J]. 中国畜牧杂志, 2009, 45(9): 16-19.

Protective Effect of Betulinic Acid on Intestinal Oxidative Damage Induced by T-2 Toxin in Mice
HUANG Chenglong1, ZHU Lijuan1, YI Xianglian1, HUANG Lin1, OU Zhaoping1, MA Yurong1, WU Jing1,2,3, LI Rongfang1,2,3,*, YI Jin’e1,2,3,*
(1. College of Veterinary Medicine, Hunan Agricultural University, Changsha 410128, China;2. Hunan Co-innovation Center of Animal Production Safety, Changsha 410128, China;3. Hunan Engineering Research Center of Livestock and Poultry Health Care, Changsha 410128, China)
Abstract: In order to explore the protective effect of betulinic acid (BA) on T-2 toxin-induced intestinal oxidative damage,60 healthy male mice were randomly divided into 6 equal groups: control, T-2 toxin, low-, medium- and high-dose BA(0.25, 0.5 and 1 mg/kg mb) plus T-2, and vitamin E plus T-2. After BA was administered for 14 days, the levels of immunoglobulin(Ig)M, IgG, and diamine oxidase (DAO) in serum were detected by enzyme-linked immunosorbent assay, the activities of catalase (CAT) and glutathione peroxidase (GSH-Px), and the contents of malondialdehyde (MDA) and glutathione (GSH) in the duodenum, jejunum and ileum were determined. Morphological changes in the jejunum were observed by hematoxylineosin (H & E) staining. The results showed that BA enhanced the levels of IgG and IgM, and reduced the activity of DAO in the serum. Meanwhile, it alleviated the decrease of CAT and GSH-Px activities caused by T-2 toxin in the intestine, increased GSH content, and decreased MDA content. Therefore, BA has a protective effect on intestinal oxidative damage induced by T-2 toxin in mice by increasing humoral immunity function, improving intestinal mucosal barrier function and enhancing intestinal antioxidant capacity.
Keywords: betulinic acid; T-2 toxin; intestinal mucosa; oxidative damage

收稿日期:2019-06-03
基金项目:湖南省教育厅重点项目(17A098);湖南省研究生科研创新项目(CX2018B411);湖南省自然科学基金项目(2017JJ3108)
第一作者简介:黄城龙(1992—)(ORCID: 0000-0002-9325-6931),男,硕士研究生,研究方向为营养代谢与动物保健。E-mail: 78345030@qq.com
*通信作者简介:
李荣芳(1982—)(ORCID: 0000-0001-8416-9943),女,讲师,博士,研究方向为营养代谢与动物保健。E-mail: lrf0408@126.com
易金娥(1976—)(ORCID: 0000-0002-9837-0565),女,教授,博士,研究方向为营养代谢与动物保健。E-mail: yibinzhen@163.com
DOI:10.7506/spkx1002-6630-20190603-019
中图分类号:O629.9;S856.4
文献标志码:A
文章编号:1002-6630(2020)11-0194-07
引文格式:黄城龙, 朱利娟, 易想炼, 等. 桦木酸对T-2毒素致小鼠肠道氧化损伤的保护作用[J]. 食品科学, 2020, 41(11): 194-200.DOI:10.7506/spkx1002-6630-20190603-019. http://www.spkx.net.cn
HUANG Chenglong, ZHU Lijuan, YI Xianglian, et al. Protective effect of betulinic acid on intestinal oxidative damage induced by T-2 toxin in mice[J]. Food Science, 2020, 41(11): 194-200. (in Chinese with English abstract) DOI:10.7506/spkx1002-6630-20190603-019. http://www.spkx.net.cn




奥鹏易百网www.openhelp100.com专业提供网络教育各高校作业资源。
您需要登录后才可以回帖 登录 | 立即注册

本版积分规则

QQ|Archiver|手机版|小黑屋|www.openhelp100.com ( 冀ICP备19026749号-1 )

GMT+8, 2024-11-1 20:29

Powered by openhelp100 X3.5

Copyright © 2001-2024 5u.studio.

快速回复 返回顶部 返回列表