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发表于 2021-2-21 19:12:29 | 显示全部楼层 |阅读模式
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热加工条件对牛血清白蛋白-葡萄糖糖基化体系抗氧化活性的影响热加工条件对牛血清白蛋白-葡萄糖糖基化体系抗氧化活性的影响
李 军1,涂宗财1,2,*,张 露1,罗 娟1
(1.江西师范大学 国家淡水鱼加工技术研发专业中心,江西省淡水鱼高值化利用工程技术研究中心,江西 南昌 330022;2. 南昌大学 食品科学与技术国家重点实验室,江西 南昌 330047)
摘 要:为了得到具备优良抗氧化活性的糖基化产物,建立牛血清白蛋白(bovine serum albumin,BSA)-葡萄糖糖基化反应模型,以可溶性蛋白、自由氨基质量浓度为指标,考察不同反应时间和反应温度下体系的糖基化反应程度;并以1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl,DPPH)自由基清除能力、2,2’-联氮-双-3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸(2,2’-azino-bis(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid),ABTS)阳离子自由基清除能力和还原能力为指标,评估上述条件对糖基化反应产物的体外抗氧化活性影响。结果表明:延长反应时间和升高反应温度均可提高糖基化反应程度,随着糖基化反应程度增加,BSA-葡萄糖体系中糖基化产物的抗氧化能力也随之增强,但反应程度过高,其抗氧化能力反而下降。反应温度为55 ℃时,反应48 h制备的糖基化体系具有最强的DPPH自由基清除能力、ABTS阳离子自由基清除能力和还原能力,其DPPH自由基清除能力、ABTS阳离子自由基清除能力半数清除率(half maximal inhibitory concentration,IC50)及还原能力(以光密度值为0.5时所需样品质量浓度ρ(OD0.5)计)分别为1.17、0.92 mg/mL和3.25 mg/mL;反应温度为80 ℃时,反应12 h制备的糖基化体系具有较强的DPPH自由基清除能力、ABTS阳离子自由基清除能力和还原能力,其DPPH自由基清除能力、ABTS阳离子自由基清除能力IC50及还原能力ρ(OD0.5)分别为1.02、0.68 mg/mL和3.62 mg/mL。综上,本实验可为控制食品热加工过程中抗氧化物质的形成提供数据参考。
关键词:糖基化反应;抗氧化;反应时间;反应温度
糖基化反应又称为美拉德反应,主要是指氨基化合物(蛋白质、氨基酸)与羰基化合物(还原糖、醛)之间发生的非酶褐变反应[1-2]。在食品加工过程中,糖基化反应会产生还原酮、杂环化合物和类黑精等一系列具有一定抗氧化活性的糖基化产物[3-5],从而提高食品的抗氧化能力。Chen Kun等[6]以木糖和牛酪蛋白水解产物为原料制备美拉德反应产物,在一定的反应时间内,其抗氧化活性随着反应时间的延长而增大;Yan Fang等[7]优化制备壳寡糖-甘氨酸体系的美拉德反应产物,经研究发现其处理的果汁比壳寡糖和甘氨酸混合处理的果汁具有更高的抗氧化能力;Chen Kangni等[8]利用鱼鳞明胶水解物和3 种糖类进行反应,发现核糖-鱼鳞明胶水解物复合物体系具有最高的抗氧化能力,可用作功能性食品配料中的抗氧化剂;Yilmaz等[9]通过测定组氨酸和葡萄糖体系中抗氧化性的研究发现,美拉德反应产物的抗氧化性随着时间的延长呈先增加后降低的趋势。目前的研究大多是评价蛋白质糖基化产物的抗氧化活性,对于通过控制反应条件来调控其抗氧化活性的研究较少。
在高蛋白、高糖类食品的加工过程中,一般使用的原料都含有丰富的蛋白质(如面包、肉质食品等),为了提高产品的品质或延长商品的货架期,通常会加入一定量的合成抗氧化剂(如丁基羟基茴香醚、二丁基羟基甲苯[10]),虽然它们能有效地清除自由基、减缓氧化反应,防止食品酸败,但其安全系数较低,对人体可能存在致癌的风险[11-12]。糖基化产物是食品热加工自身产生的一类物质,可被视为天然物质,研究也证实某些糖基化产物具有较强的抗氧化活性,其活性甚至可以和合成抗氧化剂相媲美[13-15]。所以,越来越多的学者认为通过控制热处理工艺使食品产生具有抗氧化性的产物,可作为提高食品安全性的一种潜在方法。本课题组前期研究发现牛血清白蛋白(bovine serum albumin,BSA)-葡萄糖体系在不同温度、时间热处理下可发生糖基化反应,产生果糖胺、羰基化合物、5-羟甲基糠醛和丙烯酰胺等糖基化产物[16],但是不同热处理条件对体系糖基化产物抗氧化活性尚不清晰。因此,本实验以BSA-葡萄糖体系为糖基化反应模型,通过1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl,DPPH)自由基清除能力、2,2’-联氮-双-3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸(2,2’-azinobis(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid),ABTS)阳离子自由基清除能力和还原能力实验评价反应时间和温度的变化对糖基化产物抗氧化能力的影响,从而为制备高抗氧化性蛋白质糖基化产物提供理论依据。
1 材料与方法1.1 材料与试剂
BSA、葡萄糖、DPPH(均为分析纯) 美国Sigma公司;ABTS(分析纯) 北京索莱宝科技有限公司;考马斯亮蓝G-250、邻苯二甲醛(o-phthalaldehyde,OPA)、铁氰化钾(均为分析纯) 上海阿拉丁生化科技股份有限公司;其他所需试剂均为国产分析纯。
1.2 仪器与设备
FA1104N型电子分析天平 上海丙林电子科技有限公司;DHG-9023A型电热恒温鼓风干燥箱 上海精宏实验设备有限公司;LGJ-1D-80型冷冻干燥机 北京亚泰科隆仪器技术有限公司;Synergy H1型酶标仪 美国Bio Tek公司。
1.3 方法
1.3.1 样品的制备
参照Liu Yan等[17]的干热法制备BSA-葡萄糖体系糖基化样品。将BSA溶于20 mmol/L、pH 7.4的磷酸盐缓冲液(phosphate buffered saline,PBS)配成25 mg/mL的溶液,按照葡萄糖与蛋白质量比为1∶1的比例向BSA溶液中加入葡萄糖,混匀,冷冻干燥。将冻干的粉末置于恒温烘箱中进行糖基化反应,反应条件为55 ℃分别反应6、12、24、36、48、72 h,或分别于50、60、70、80、90、100 ℃下反应12 h。烘箱内放置饱和KI溶液以维持相对湿度为65%。待糖基化反应结束后,将样品置于冰水浴中终止反应,并置于4 ℃冰箱中保存待测。
同样的时间节点,联想、海尔崛起,他们见证了中国科研设计院所的成长,也正在继续亲历着中国设计产业发展的辉煌。
1.3.2 可溶性蛋白质量浓度的测定
本研究40例膝关节损伤患者相关数据应用SPSS19.0软件对比分析,MRI检查与CT检查膝关节积液、半月板损伤、韧带损伤、骨质损伤等检出情况行χ2检验,采用(n%)表示。组间对比差异性较高(P<0.05),本研究结果有统计学意义。
采用考马斯亮蓝法测定样品中的可溶性蛋白质量浓度[18]。取50 μL稀释到适宜质量浓度的样品溶液与200 μL 0.1 mg/mL考马斯亮蓝G-250溶液于96 孔酶标板中混匀,50 μL的蒸馏水代替样品溶液作为空白对照,室温混合静置1 min后于595 nm波长处测定OD值。以不同质量浓度(20~200 μg/mL)的BSA标准溶液作标准曲线,根据标准曲线计算样品溶液中的可溶性蛋白质量浓度。实验重复3 次。
1.3.3 自由氨基质量浓度的测定
采用OPA法测定样品中的自由氨基质量浓度[19]。称取80 mg OPA溶解于2 mL甲醇中,分别加入5 mL 20 g/100 mL的十二烷基硫酸钠(sodium dodecyl sulfate,SDS)溶液、50 mL 0.1 mol/L硼砂溶液和200 μL β-巯基乙醇,蒸馏水定容至100 mL配成OPA溶液。取200 μL稀释到适宜质量浓度的样品溶液加入到4 mL OPA溶液中混匀,以200 μL蒸馏水代替样品作为空白对照,避光反应2 min后于340 nm波长处测定吸光度。以不同质量浓度(0.05~1.00 mg/mL)的赖氨酸标准溶液作标准曲线,利用标准曲线计算样品中自由氨基的质量浓度。实验重复3 次。
1.3.4 DPPH自由基清除能力的测定
采用DPPH自由基清除能力实验比较样品之间的自由基清除能力[7]。分别取100 μL 10 mg/mL样品溶液与100 μL 0.15 mmol/L DPPH自由基溶液(甲醇配制)于96 孔酶标板上混匀,室温下避光反应30 min后于517 nm波长处测定吸光度(Ai)。以100 μL甲醇代替样品的反应体系为控制组(Ac),以100 μL PBS(0.2 mol/L、pH 7.4)代替DPPH自由基溶液的反应体系为样品空白组(Aj),分别以100 μL甲醇和PBS代替样品和DPPH自由基溶液的反应体系为空白组(Ab)。采用两倍稀释法进行实验,以槲皮素为阳性对照,结果用抑制率表示。实验重复3 次,采用Origin 8.6软件中的多项拟合计算样品清除自由基的半抑制浓度(half maximal inhibitory concentration,IC50)/(mg/mL)。DPPH自由基清除能力按下式计算。
   
1.3.5 ABTS阳离子自由基清除能力的测定
采用ABTS阳离子自由基清除能力实验来评价样品中的总抗氧化能力[20]。称取38.4 mg ABTS和6.623 mg过硫酸钾混合,蒸馏水溶解后并定容至10 mL配成ABTS母液。室温避光反应12~16 h后用PBS稀释ABTS母液至734 nm波长处吸光度为0.70±0.02左右。分别移取50 μL 5 mg/mL样品溶液与150 μL ABTS溶液于96 孔酶标板上混匀,室温下避光反应6 min后于734 nm波长处测定吸光度(Ai)。以50 μL甲醇代替样品的反应体系为控制组(Ac),以150 μL PBS代替ABTS溶液的反应体系为样品空白组(Aj),以50 μL甲醇和150 μL PBS分别代替样品和ABTS溶液的反应体系为空白组(Ab)。采用两倍稀释法进行实验,以槲皮素为阳性对照,结果用抑制率表示。实验重复3 次,采用Origin 8.6软件中的多项拟合计算样品的IC50/(mg/mL)。ABTS阳离子自由基清除能力按1.3.4节公式计算。
以上资料说明,“国人”指“二三子”。通过对比,《左传》的“群臣”亦即《国语》的“二三子”,而“二三子”所指为何,必然成为我们理清“国人”内涵的关键。寻诸左氏之文,僖公十五年,晋韩之战败:
1.3.6 还原能力的测定
《无衣》表现的是对周天子的尊重。 礼规定侯伯的服装七种图案,卿六种。 《周礼·春官·典命》:“侯伯七命,其国家、宫室、车骑、衣服、礼仪,皆以七为节。 ……王之三公八命,其卿六命,其大夫四命。”[5] 东周时期,诸侯强大,不听周王之号令。 晋武公扩大领土之后,独请于周僖王,被封为晋侯。 诗中表现出十分恳切的态度。
为了解消费者对跨境进口电商网站标价方式的感知状况,帮助线上零售商选择最佳的网站商品标价方式和营销策略,以使商家与消费者的收益最大化,特此展开问卷调查。问卷内容主要涉及消费者对跨境电子商务零售进口税收政策的了解以及购物决策受线上零售商标价方式的影响程度。本次调查共发放纸质问卷60份,网络问卷110份,共回收170份,有效问卷150份,其中有购买过进口商品的有97份,没有购买过进口商品的有53份。
参照Khadidja等[21]的方法评价样品的还原能力。分别移取0.2 mL不同质量浓度的样品溶液(1、2、4、6、8、10 mg/mL)与0.3 mL质量分数1%铁氰化钾混合,50 ℃水浴20 min后,加入0.3 mL质量分数10%三氯乙酸终止反应。分别加入0.6 mL的蒸馏水和0.15 mL质量分数0.1%三氯化铁,摇匀后取200 μL溶液于700 nm波长处测定吸光度。0.15 mL的蒸馏水代替三氯化铁作为空白对照。以槲皮素为阳性对照,ρ(OD0.5)表示使反应体系的光密度值为0.5时所需要的样品质量浓度。实验重复3 次。
如今,兼任了贵州省大数据产业发展应用研究院首任院长的梅宏,正不断壮大具有核心竞争力的大数据产业,推动着贵州大数据产业集群发展。
1.4 数据处理与分析
所有实验均重复3 次,数据均以表示。采用Origin 8.6软件作图,通过SPSS 22.0软件对数据进行单因素方差分析,使用Tukey HSD程序进行差异显著性分析。P<0.05认为差异性显著。
2 结果与分析2.1 可溶性蛋白质量浓度分析结果
BSA-葡萄糖糖基化体系中的可溶性蛋白质量浓度变化如表1所示,在不同反应条件下,样品之间的可溶性蛋白质量浓度具有相似的变化趋势,均随着反应时间延长和温度递增而降低,这说明BSA和葡萄糖之间发生了共价结合而消耗了BSA,从而促进糖基化反应进程。固定反应温度为55 ℃,在反应时间超过36 h时,其可溶性蛋白质量浓度从1.025 mg/mL降低到72 h的0.894 mg/mL;固定反应时间为12 h,在反应温度高于80 ℃时,其可溶性蛋白质量浓度从1.156 mg/mL显著降低到90 ℃的0.177 mg/mL,且在100 ℃没有检测出。与反应时间相比,反应温度的升高使可溶性蛋白质量浓度降低得更加明显,这可能是因为高温处理促进糖基化反应进程,BSA结构被破坏,更容易和葡萄糖发生共价结合,使得样品中可溶性蛋白质量浓度显著降低[22]。Guan Yongguang等[23]研究甘氨酸-葡萄糖体系时发现,随着反应程度的加深,其甘氨酸含量下降得越快。
表1 反应时间和反应温度对BSA-葡萄糖糖基化体系中可溶性蛋白质量浓度的影响
Table 1 Effect of reaction time and temperature on soluble protein content in BSA-glucose glycosylation system
     
注:N.D.未检出;同列肩标小写字母不同代表样品间差异显著(P<0.05)。表2同。
(mg/mL)反应温度/℃蛋白质量浓度/(mg/mL)6 1.127±0.005e 50 1.207±0.026d 12 1.083±0.004d 60 1.085±0.009b 24 1.069±0.002d 70 1.176±0.004cd 36 1.025±0.019c 80 1.156±0.013c 48 0.935±0.014b 90 0.177±0.005a 72 0.894±0.009a 100 N.D.反应时间/h 蛋白质量浓度/

2.2 自由氨基质量浓度分析结果
糖基化反应是指还原糖的羰基与蛋白质的氨基之间发生共价结合的化学反应,可以通过测定反应体系中的自由氨基质量浓度来反映糖基化反应进程[24]。从图1可以看出,样品经糖基化反应后其自由氨基质量浓度显著低于对照组BSA(P<0.05),且其自由氨基质量浓度约比对照组BSA低0.11~0.21 mg/mL,说明BSA和葡萄糖之间发生反应消耗了BSA上的自由氨基。可能的原因是BSA上的氨基酸残基易发生氧化,其氨基基团的丢失导致自由氨基质量浓度下降,这和Meltretter等[25]报道基本一致。但当反应时间超过6 h时,样品的自由氨基质量浓度变化较小,而当反应温度高于60 ℃时,样品的自由氨基质量浓度几乎不再发生改变,这可能是因为当糖基化反应达到一定程度时,BSA-葡萄糖反应体系中的葡萄糖已被消耗,继续延长反应时间或者升高反应温度无法再提高反应程度,已经不能明显改变自由氨基质量浓度[19]。
     
图1 反应时间和反应温度对BSA自由氨基质量浓度的影响
Fig. 1 Effect of reaction time and temperature on the content of free amino groups in BSA

2.3 DPPH自由基清除能力分析结果     
图2 BSA-葡萄糖糖基化体系的DPPH自由基清除能力
Fig. 2 DPPH radical scavenging capacity of BSA-glucose glycosylation system

表2 BSA-葡萄糖糖基化体系中DPPH自由基清除能力、ABTS阳离子自由基清除能力的IC50和还原能力的ρ(OD0.5)
Table 2 IC50value for DPPH and ABTS cation radical scavenging capacity and ρ(OD0.5) for reduction power of BSA-glucose glycosylation system
     
注:*.该数据单位为μg/mL。
反应时间/h还原能力ρ(OD0.5)/(mg/mL)6 1.87±0.12d 3.66±0.12f 5.42±0.04f 50 2.64±0.14e 4.44±0.16d N.D.12 1.77±0.19cd 2.12±0.20e 3.99±0.01d 60 1.62±0.14d 1.70±0.11c 4.54±0.30c 24 1.49±0.07bc 1.28±0.06cd 4.60±0.01e 70 1.06±0.05bc 0.70±0.06b 3.84±0.05b 36 1.21±0.02b 1.03±0.11bc 3.43±0.04c 80 1.02±0.03b 0.68±0.02b 3.62±0.02b 48 1.17±0.04b 0.92±0.03b 3.25±0.03b 90 1.51±0.02cd 0.58±0.01b 7.33±0.22e 72 3.40±0.25e 1.49±0.06d 7.31±0.07g 100 1.69±0.02d 0.66±0.02b 5.81±0.13d槲皮素 6.92±0.50a* 10.73±0.51a*82.97±0.77a* 槲皮素 6.92±0.50a* 10.73±0.51a* 82.97±0.77a*DPPH自由基清除能力IC50/(mg/mL)ABTS阳离子自由基清除能力IC50/(mg/mL)还原能力ρ(OD0.5)/(mg/mL)反应温度/℃DPPH自由基清除能力IC50/(mg/mL)ABTS阳离子自由基清除能力IC50/(mg/mL)

本实验采用DPPH自由基清除能力实验比较不同反应条件下BSA-葡萄糖糖基化体系的抗氧化能力。样品的DPPH自由基清除能力如图2所示,其IC50如表2所示。在样品的测试质量浓度范围内(0.31~10.00 mg/mL),所有样品的DPPH自由基清除能力均低于阳性对照槲皮素,但具有一定的DPPH自由基清除能力,且DPPH自由基清除能力随着样品质量浓度的递增而增加。固定温度为55 ℃,在反应48 h时制备的样品具有最强的DPPH自由基清除能力,其IC50仅为1.17 mg/mL,其次为36 h时制备的样品,反应72 h样品的DPPH自由基清除能力最低,其IC50约为48 h时的2.9 倍;固定时间为12 h,在80 ℃条件下制备的样品具有最强的DPPH自由基清除能力,其IC50仅为1.02 mg/mL,其次为70 ℃条件下制备的样品,反应温度为50 ℃时制备的样品DPPH自由基清除能力最低,其IC50约为80 ℃时的2.6 倍。BSA-葡萄糖糖基化体系的抗氧化能力增加的原因是样品经糖基化处理后,产生的糖基化产物(如类黑精[26])具有供氢能力,与DPPH自由基结合形成DPPH-H分子,使得DPPH自由基清除能力提高[27],同时Dong Shiyuan等[28]证实了葡萄糖的焦糖化作用会使DPPH自由基清除能力增加。持续延长反应时间或升高反应温度,其DPPH自由基清除能力反而下降,这可能是因为随着糖基化反应程度的加剧,糖基化产物的结构变得紧密,使一些与DPPH自由基反应的基团被包埋,导致其DPPH自由基清除能力降低[29]。因此,在固定温度为55 ℃,反应48 h,或者固定反应时间为12 h,80 ℃条件下制备的糖基化产物具有最强的DPPH自由基清除能力。
2)____Christmas is a day when people celebrate the good harvest and thank God for it.
2.4 ABTS阳离子自由基清除能力分析结果     
图3 BSA-葡萄糖糖基化体系的ABTS阳离子自由基清除能力
Fig. 3 Effect of reaction time and temperature on ABTS cation radical scavenging capacity of BSA-glucose glycosylation system

BSA-葡萄糖糖基化体系中的ABTS阳离子自由基清除能力如图3所示,其IC50如表2所示。样品清除ABTS阳离子自由基能力的变化趋势与DPPH自由基的变化趋势相似,这可能是因为ABTS阳离子自由基清除能力和DPPH自由基清除能力都反映了样品供氢的能力[30]。固定温度为55 ℃,在反应48 h时制备的样品具有最强的ABTS阳离子自由基清除能力,其IC50仅为0.92 mg/mL,其次为36 h时制备的样品,而样品在6 h时的ABTS阳离子自由基清除能力最低,其IC50约为48 h时的4.0 倍;固定时间为12 h,在90 ℃条件下制备的样品具有最强的ABTS阳离子自由基清除能力,其IC50为0.58 mg/mL,但与80 ℃样品的ABTS阳离子自由基清除能力无显著性差异(P>0.05),样品在50 ℃时的ABTS阳离子自由基清除能力最低。在反应过程中,BSA-葡萄糖糖基化体系中的ABTS阳离子自由基清除能力先随着反应程度的增加而增大,这是因为生成的部分中间产物和类黑精具有一定的抗氧化活性[31-32],作为供氢体,使得糖基化改性后BSA的自由基清除能力提高;但在固定温度为55 ℃、反应72 h,或者固定时间为12 h,100 ℃条件下制备样品的ABTS阳离子自由基清除能力有所降低,这可能是因为随着糖基化反应程度的持续增加,一些具有供氢能力的中间产物逐渐转化形成结构复杂、聚合度不等的类黑精[31],类黑精积累形成大量的黑色物质并难以溶解,使糖基化产物中主要的抗氧化活性成分含量降低,导致其ABTS阳离子自由基清除能力降低。综合前期实验[16]考虑,为了降低糖基化后期有害产物的积累,故选择在固定温度为55 ℃、反应48 h或者固定反应时间为12 h、80 ℃条件下制备糖基化产物,该条件下制得的糖基化产物具有较高的ABTS阳离子自由基清除能力。
2.5 还原能力分析结果     
图4 BSA-葡萄糖糖基化体系的还原能力
Fig. 4 Effect of reaction time and temperature on reducing power of BSA-glucose glycosylation system

还原能力测定是指样品溶液中的还原剂将铁氰化钾(三价铁)还原成亚铁氰化钾(二价铁),进一步与三氯化铁反应生成普鲁士蓝,此时的样品溶液在700 nm波长处具有最大光密度值,光密度值越大则代表样品的还原能力越强[33]。BSA-葡萄糖体系中糖基化产物的还原能力结果如图4所示,其ρ(OD0.5)如表2所示。随着糖基化反应程度的增加,样品的还原能力呈现出先增大后下降的趋势(P<0.05)。在固定温度55 ℃,反应时间为48 h时制备的样品具有最高的还原能力,其ρ(OD0.5)为3.25 mg/mL,其次是反应36 h制备的样品,而样品在72 h的还原能力最弱;在固定反应时间为12 h时,糖基化温度为80 ℃时制备的样品具有最高的还原能力,其ρ(OD0.5)仅为3.62 mg/mL,其次是70 ℃制备的样品,而糖基化温度为50 ℃时制备样品的还原能力最弱。这是因为美拉德反应中间产物的酮基、高级产物的吡咯和羟基基团都具有一定的还原能力,所以样品的还原能力与美拉德反应程度相关[28,34-35]。在糖基化反应过程中,其中间产物是发挥还原能力的主要活性物质,是良好的电子供体[36],其供应的电子使Fe3+还原成Fe2+,导致样品的还原能力增加。Yoshimura等[37]曾报道,随着葡萄糖-甘氨酸混合物反应时间的延长,葡萄糖和甘氨酸提供了强还原材料,还原能力呈线性增加。而样品还原能力下降的原因可能是随着糖基化反应程度的增加,过度的热处理或者高温条件下使得部分具有还原能力的中间产物被分解所致。
3 结 论
本实验以BSA-葡萄糖体系为糖基化反应模型,通过测定糖基化体系中的可溶性蛋白质量浓度、自由氨基质量浓度以及糖基化产物的DPPH自由基清除能力、ABTS阳离子自由基清除能力和还原能力,研究糖基化条件变化对糖基化反应程度以及糖基化产物的抗氧化能力的影响。结果表明,延长反应时间和升高反应温度可促进糖基化反应的进程,使得BSA-葡萄糖体系中的可溶性蛋白和自由氨基质量浓度显著下降。体外抗氧化实验结果表明,样品的DPPH自由基清除能力、ABTS阳离子自由基清除能力和还原能力随着糖基化反应程度的增加呈现出先增大后降低的趋势。结合前期不同反应条件对糖基化产物影响的研究,发现在55 ℃反应48 h或者80 ℃条件下反应12 h时制备的样品具有较强的抗氧化能力。综上,本研究为定向调控生产具备抗氧化能力的蛋白类食品,提高其品质、安全性,扩展食物资源提供了理论指导。
参考文献:
[1] 许彩虹, 王金梅, 姚玉静, 等. 食品中蛋白质糖基化接枝的研究进展[J]. 现代食品科技, 2017, 33(8): 306-312; 261. DOI:10.13982/j.mfst.1673-9078.2017.8.044.
[2] LIU J H, RU Q M, DING Y T. Glycation a promising method for food protein modification: physicochemical properties and structure,a review[J]. Food Research International, 2012, 49(1): 170-183.DOI:10.1016/j.foodres.2012.07.034.
[3] 王文琼, 包怡红, 陈颖. 乳清分离蛋白美拉德反应产物的体外抗氧化特性[J]. 食品科学, 2013, 34(9): 56-60. DOI:10.7506/spkx1002-6630-201309013.
[4] 侯银菊. 美拉德反应及其产物的抗氧化性研究[D]. 保定: 河北大学,2006: 7-11.
[5] NOOSHKAM M, VARIDI M, BASHASH M. The Maillard reaction products as food-born antioxidant and antibrowning agents in model and real food systems[J]. Food Chemistry, 2019, 275: 644-660.DOI:10.1016/j.foodchem.2018.09.083.
[6] CHEN Kun, ZHAO Jiajia, SHI Xiaohan, et al. Characterization and antioxidant activity of products derived from xylose-bovine casein hydrolysate Maillard reaction: impact of reaction time[J]. Foods, 2019,8(7): 242. DOI:10.3390/foods8070242.
[7] YAN Fang, YU Xueqing, JING Yingjun. Optimized preparation,characterization, and antioxidant activity of chitooligosaccharide-glycine Maillard reaction products[J]. Journal of Food Science and Technology-Mysore, 2018, 55(2): 712-720. DOI:10.1007/s13197-017-2982-0.
[8] CHEN Kangni, YANG Xiaoxue, HUANG Zhan, et al. Modification of gelatin hydrolysates from grass carp (Ctenopharyngodon idellus)scales by Maillard reaction: antioxidant activity and volatile compounds[J]. Food Chemistry, 2019, 295: 569-578. DOI:10.1016/j.foodchem.2019.05.156.
[9] YILMAZ Y, TOLEDO R. Antioxidant activity of water-soluble Maillard reaction products[J]. Food Chemistry, 2005, 93(2): 273-278.DOI:10.1016/j.foodchem.2004.09.043.
[10] 宋阳, 官咏仪, 邹志飞, 等. 植物油中的丁基羟基茴香醚和二丁基羟基甲苯的超高效合相色谱测定法[J]. 职业与健康, 2016, 32(3): 328-331. DOI:10.13329/j.cnki.zyyjk.2016.0154.
[11] 杨菊芬. 浅谈食品添加剂在食品生产中的应用[J]. 食品安全导刊,2016(12): 83-84. DOI:10.16043/j.cnki.cfs.2016.12.053.
[12] 鲁倩, 林亲录, 吴伟, 等. 糖基化修饰产物的抗氧化功能研究进展[J]. 食品工业科技, 2013, 34(9): 382-386. DOI:10.13386/j.issn1002-0306.2013.09.078.
[13] 杨健, 李芳菲, 武淑影, 等. 大豆蛋白美拉德反应产物的抗氧化特性及其机理[J]. 中国食品学报, 2017, 17(2): 44-51. DOI:10.16429/j.1009-7848.2017.02.007.
[14] 章银良, 卢慢慢, 张陆燕. 不同条件下美拉德反应产物抗氧化活性的研究综述[J]. 中国调味品, 2015, 40(11): 120-127. DOI:10.3969/j.issn.1000-9973.2015.11.031.
[15] PAPETTI A, DAGLIA M, ACETI C, et al. Isolation of an in vitro and ex vivo antiradical melanoidin from roasted barley[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2006, 54(4): 1209-1216.DOI:10.1021/jf058133x.
[16] 李军, 涂宗财, 沙小梅, 等. 反应条件对牛血清白蛋白-葡萄糖体系糖基化产物形成的影响[J]. 食品与发酵工业, 2019, 45(5): 87-93; 100.DOI:10.13995/j.cnki.11-1802/ts.018112.
[17] LIU Yan, ZHAO Guanli, ZHAO Mouming, et al. Improvement of functional properties of peanut protein isolate by conjugation with dextran through Maillard reaction[J]. Food Chemistry, 2012, 131(3):901-906. DOI:10.1016/j.foodchem.2011.09.074.
[18] 罗群. 考马斯亮蓝法快速测定菜籽粕中可溶性蛋白质的含量[J]. 成都大学学报(自然科学版), 2014, 33(2): 125-126; 129. DOI:10.3969/j.issn.1004-5422.2014.02.007.
[19] LI Z, LUO Y, FENG L. Effects of Maillard reaction conditions on the antigenicity of α-lactalbumin and β-lactoglobulin in whey protein conjugated with maltose[J]. European Food Research & Technology,2011, 233(3): 387-394. DOI:10.1007/s00217-011-1532-7.
[20] ZHANG H, YANG Y F, ZHOU Z Q. Phenolic and flavonoid contents of mandarin (Citrus reticulata Blanco) fruit tissues and their antioxidant capacity as evaluated by DPPH and ABTS methods[J].Journal of Integrative Agriculture, 2018, 17(1): 256-263. DOI:10.1016/S2095-3119(17)61664-2.
[21] KHADIDJA L, ASMA C, MAHMOUD B, et al. Alginate/gelatin crosslinked system through Maillard reaction: preparation,characterization and biological properties[J]. Polymer Bulletin, 2017,74(12): 4899-4919. DOI:10.1007/s00289-017-1997-z.
[22] BU G H, ZHANG N, CHEN F S. The influence of glycosylation on the antigenicity, allergenicity, and structural properties of 11S-lactose conjugates[J]. Food Research International, 2015, 76(3): 511-517.DOI:10.1016/j.foodres.2015.08.004.
[23] GUAN Yongguang, ZHANG Benshan, YU Shujuan, et al. Effects of ultrasound on a glycin-glucose model system: a means of promoting Maillard reaction[J]. Food and Bioprocess Technology, 2011, 4(8):1391-1398. DOI:10.1007/s11947-009-0251-6.
[24] WANG Y L, ZHAO Y, ANDRAEMAROBELA K, et al. Tea polysaccharides as food antioxidants: an old woman’s tale?[J].Food Chemistry, 2013, 138(2/3): 1923-1927. DOI:10.1016/j.foodchem.2012.09.145.
[25] MELTRETTER J, PISCHETSRIEDER M. Application of mass spectrometry for the detection of glycation and oxidation products in milk proteins[J]. Annals of the New York Academy of Sciences, 2008,1126: 134-140. DOI:10.1196/annals.1433.022.
[26] WANG H Y, HE Q, YAO W R. Melanoidins produced by the Maillard reaction: structure and biological activity[J]. Food Chemistry, 2011,128(3): 573-584. DOI:10.1016/j.foodchem.2011.03.075.
[27] 田明, 涂宗财, 王辉, 等. 高压脉冲电场结合糖基化对β-乳球蛋白过敏原性与功能性质的影响[J]. 食品科学, 2017, 38(13): 90-95.DOI:10.7506/spkx1002-6630-201713015.
[28] DONG Shiyuan, PANYA A, ZENG Mingyong, et al. Characteristics and antioxidant activity of hydrolyzed β-lactoglobulin-glucose Maillard reaction products[J]. Food Research International, 2012,46(1): 55-61. DOI:10.1016/j.foodres.2011.11.022.
[29] 黄小琴. 基于质谱技术的蛋白质组学方法对食品蛋白质糖基化的研究[D]. 南昌: 南昌大学, 2013: 51-52.
[30] FATIHA B, DIDIER H, NAIMA G, et al. Phenolic composition, in vitro antioxidant effects and tyrosinase inhibitory activity of three Algerian Mentha species: M. spicata (L.), M. pulegium (L.) and M. rotundifolia (L.) Huds (Lamiaceae)[J]. Industrial Crops & Products,2015, 74: 722-730. DOI:10.1016/j.indcrop.2015.04.038.
[31] 吕承秀, 王帅, 于晓旭. 类黑精研究进展[J]. 粮食与油脂, 2009(12):45-47. DOI:10.3969/j.issn.1008-9578.2009.12.016.
[32] BORRELLI R C, VISCONTI A, MENNELLA C, et al. Chemical characterization and antioxidant properties of coffee melanoidins[J].Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2002, 50(22): 6527-6533.DOI:10.1021/jf025686o.
[33] 时惠敏, 胡春霞. 基于Fe2+的显色反应测定还原性药物的研究进展[J]. 广州化工, 2015, 43(7): 39-41. DOI:10.3969/j.issn.1001-9677.2015.07.016.
[34] LIMSUWANMANEE J, CHAIJAN M, MANURAKCHINAKORN S,et al. Antioxidant activity of Maillard reaction products derived from stingray (Himantura signifier) non-protein nitrogenous fraction and sugar model systems[J]. LWT-Food Science and Technology, 2014,57(2): 718-724. DOI:10.1016/j.lwt.2014.01.042.
[35] RAO M S, CHAWLA S P, CHANDER R, et al. Antioxidant potential of Maillard reaction products formed by irradiation of chitosanglucose solution[J]. Carbohydrate Polymers, 2011, 83(2): 714-719.DOI:10.1016/j.carbpol.2010.08.045.
[36] LIU P, HUANG M G, SONG S Q, et al. Sensory characteristics and antioxidant activities of Maillard reaction products from soy protein hydrolysates with different molecular weight distribution[J]. Food &Bioprocess Technology, 2012, 5(5): 1775-1789. DOI:10.1007/s11947-010-0440-3.
[37] YOSHIMURA Y, IIJIMA T, WATANABE T, et al. Antioxidative effect of Maillard reaction products using glucose-glycine model system[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 1997, 45(10):4106-4109. DOI:10.1021/jf9609845.

Effect of Heat Processing Conditions on the Antioxidant Activity of Bovine Serum Albumin-Glucose Glycosylation System
LI Jun1, TU Zongcai1,2,*, ZHANG Lu1, LUO Juan1
(1. National R & D Center for Freshwater Fish Processing, Engineering Research Center for Freshwater Fish High-Value Utilization of Jiangxi Province, Jiangxi Normal University, Nanchang 330022, China;2. State Key Laboratory of Food Science and Technology, Nanchang University, Nanchang 330047, China)
Abstract:In order to obtain glycosylation products with excellent antioxidant activity, a bovine serum albumin (BSA)-glucose glycosylation model was established. The contents of soluble protein and free amino groups were used as indicators of the glycosylation degree of the system at different reaction times and temperatures. The 1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl(DPPH) free radical scavenging capacity, 2,2’-azino-bis(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid) (ABTS) cation radical scavenging capacity and reducing power assays were applied to investigate the in vitro antioxidant activity of glycosylation products. The results showed that prolonging the reaction time and improving the reaction temperature could increase the glycation degree. With increasing glycation degree, the antioxidant capacity of BSA-glucose system first increased and then decreased. The product obtained after reaction at 55 ℃ for 48 h had the strongest DPPH and ABTS cation radical scavenging capacity with half maximal inhibitory concentration (IC50) of 1.17 and 0.92 mg/mL,respectively, and the strong reducing power with a concentration required for optical density of 0.5 (ρ(OD0.5)) of and 3.25 mg/mL. In contrast, the product obtained after 12 h reaction 80 ℃ exhibited IC50 of 1.02 and 0.68 for DPPH and ABTS cation radical scavenging, respectively and ρ(OD0.5) of 3.62 mg/mL. Therefore, this study can provide useful data for controlling the formation of antioxidants in thermal food processing.
Keywords: glycation reaction; antioxidant; reaction time; reaction temperature

收稿日期:2019-06-04
基金项目:国家自然科学基金面上项目(21878135);江西省科技计划项目(20141BBF60043);江西师范大学青年英才计划项目
第一作者简介:李军(1994—)(ORCID: 0000-0003-2542-6369),男,硕士研究生,研究方向为食品生物化学。E-mail: 13677982511@163.com
*通信作者简介:涂宗财(1965—)(ORCID: 0000-0001-8877-4681),男,教授,博士,研究方向为农副产品加工及高值化利用。E-mail: Tuzc_mail@aliyun.com
DOI:10.7506/spkx1002-6630-20190604-035
中图分类号:TS201.6
文献标志码:A
文章编号:1002-6630(2020)11-0007-07
引文格式:李军, 涂宗财, 张露, 等. 热加工条件对牛血清白蛋白-葡萄糖糖基化体系抗氧化活性的影响[J]. 食品科学, 2020, 41(11):7-13. DOI:10.7506/spkx1002-6630-20190604-035. http://www.spkx.net.cn
LI Jun, TU Zongcai, ZHANG Lu, et al. Effect of heat processing conditions on the antioxidant activity of bovine serum albumin-glucose glycosylation system[J]. Food Science, 2020, 41(11): 7-13. (in Chinese with English abstract) DOI:10.7506/spkx1002-6630-20190604-035. http://www.spkx.net.cn




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