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多阶导数紫外光谱法快速测定生物转化液中的肉桂醇、肉桂醛和肉桂酸多阶导数紫外光谱法快速测定生物转化液中的肉桂醇、肉桂醛和肉桂酸 江艳艳1，粟桂娇2，马 丽1,*，黄秋容1，于 唱1，李丽丽1 （1.广西大学化学化工学院，广西 南宁 530004；2.广西大学生命科学与技术学院，广西 南宁 530004） 摘 要：为高效筛选转化肉桂醛为天然肉桂醇的微生物菌株，建立直接、快速测定生物转化液中的肉桂醇、肉桂醛和肉桂酸含量的多阶导数紫外光谱法。对3 个组分的紫外吸收光谱进行二阶或三阶导数处理，选择各组分合适的检测波长；在选定波长下建立各组分吸收光谱的导数值对质量浓度的工作曲线。结果表明：肉桂醛和肉桂酸分别在320 nm和306 nm波长处的二阶导数值与其质量浓度分别在0.52～9.27 mg/L和0.51～9.24 mg/L范围内有良好的线性关系，平均回收率分别为103.3%和104.1%，相对标准偏差（relative standard deviation，RSD）为4.1%和2.1%；肉桂醇在256 nm波长处的三阶导数值与其质量浓度在0.55～5.47 mg/L范围内有良好的线性关系，平均回收率为98.0%，RSD为3.5%。利用该方法，样品中各组分不需提取分离即可直接稀释测定，可用于微生物转化肉桂醛制备肉桂醇以应实验菌株的快速高效筛选。 关键词： 多阶导数紫外光谱法；肉桂醛；肉桂醇；肉桂酸；生物转化 天然香料以其绿色、安全、环保等特点，日益受到消费者的青睐。采用物理提取的方法从动、植物体内获取的天然香料远不能满足人们的消费需求。利用微生物转化技术获得的香料可视为“天然品”[1-3]，附加值高，是天然香精香料研究领域关注的焦点[4-6]。在微生物转化以应中，高效生产菌株的筛选是开展微生物转化研究的前提，可以通过监测转化体系实现，但工作量非常繁重。因此，建立用于监测生物转化体系的简便、快捷、有效的分析方法，对于实验菌株的高效筛选具有非常重要的意义。 肉桂醇是风信子香精的主香剂，在香石竹、玫瑰、茉莉、铃兰、葵花、紫丁香等香精中也经常使用，还可用于杏子、桃子、草莓、柠檬等食品及白兰地酒用香精中[7]。通过肉桂醛选择性加氢制备肉桂醇，一直以来是催化领域研究的热点[8-9]，但通过化学催化法得到的肉桂醇不能视为“天然品”，产品附加值低。利用微生物转化可以实现由肉桂醛选择加氢制备肉桂醇，开辟了天然肉桂醇的新来源[10-12]。筛选高活性菌株是提高转化以应转化率和以应选择性的有效手段。在微生物转化肉桂醛的以应中，肉桂醛容易被氧化成肉桂酸，与产物肉桂醇同时存在。文献报道同时测定肉桂醇、肉桂醛和肉桂酸3 个组分的分析方法主要为色谱法[13-15]。虽然色谱法灵敏度高、可信度强，但设备价格昂贵，样品需要进行前分离处理，操作繁琐耗时，在生物转化的前期筛菌工作中需要投入较高的成本和精力。 紫外分光光度法操作简便、迅速，广泛应用于食品、药品及精细化学品等的分析[16-18]。但是直接扫描肉桂醇、肉桂醛、肉桂酸3 个组分得到的紫外光谱相互重叠，而且由于生物转化液含有多种有机培养基及无机盐，成分复杂，对产物的测定会造成一定的干扰，因此，紫外分光光度法不能直接用于实验菌株的筛选。 导数光谱是通过对吸收光谱进行一阶或多阶求导变换获得，是紫外吸收光谱派生的一个分支。导数光谱法能从重叠的吸收光谱中分离出多组分样品各自对应的吸收峰，排除背景和基质的干扰，提高重叠谱带及平坦谱带的分辨率，可用于定性鉴别和定量分析[19-21]。复杂的多组分试样可不经分离直接用导数光谱法进行测定，方法简便、快速、准确，可大大节省试剂、时间和人力，被广泛用于药品[22-25]、食品[26-29]和生物质[30]的分析。但其用于筛选微生物转化菌株的研究还鲜有报道。本研究利用导数光谱法的特点，对3 个组分的紫外吸收光谱进行二阶或三阶导数处理，不仅解决了肉桂醇、肉桂醛、肉桂酸3 个组分紫外光谱相互重叠的问题，还消除了转化液培养基对检测的干扰，实现了3 个组分的快速测定。利用该方法对微生物转化样品直接进行测定，操作简便快捷、成本低、实用性强，可大大提高利用微生物转化肉桂醛制备天然肉桂醇前期筛菌工作的效率。 研究数据结果得出数据录入WPS xls表格中,统计学处理借助软件SPSS21.0实现,术后疼痛程度评分结果由均数±标准差(±s)形式描述,组间数据结果对比经过t检验;治疗效果、术后复发率均由数(n)或率(%)形式描述,组间数据结果对比采用χ2检验,P<0.05说明差异有统计学意义。 在构建学习共同体时，应该遵循“组内异质，组间同质”的原则，以学习者特征分析数据为依据，以促进沟通交流为目的，从而为课堂活动的顺利展开打下基础。 1 材料与方法1.1 材料与试剂肉桂醇标准品（98%）、肉桂酸标准品（纯度≥99.5%） 国药集团化学试剂有限公司；肉桂醛标准品（98%） 上海麦克林生化科技有限公司；无水乙醇（分析纯） 广东光华科技股份有限公司。 1.2 仪器与设备8453紫外-可见分光光度计 美国Agilent公司；Precisa XB120A分析天平 上海精科天美仪器有限公司；3-18K台式高速冷冻离心机 德国Sigma公司。 1.3 方法1.3.1 溶液的配制 培养液空白溶液：以培养实验菌株的液体培养基作为培养液空白溶液；单一标准品储备液：准确称取肉桂醇、肉桂醛和肉桂酸标准品适量，以无水乙醇为溶剂，配制成质量浓度分别为109.4、103.0、102.7 mg/L的标准液，将其作为储备液备用。 书中记录了一些医学认识，如疾病：癞病、白痂、生疮、烧伤、疥廯皮疹、秃发、衣物长霉、房屋长霉，但治疗方法当时非常简单，就是知道什么是不洁的不碰，碰了以后要清洗或烧掉。而对于病人，当时能够使用的方法就是隔离或驱逐，因为没有办法治疗。而制止一次瘟疫的方法竟然是杀死了两个人，这与其说是用巫术的方法消灭瘟疫，不如说是用巫术的方法掩盖杀人的罪行。可是，一些疾病恰恰来源于它们的生活习惯，来源于他们还不能认识的细菌和病毒。 1.3.2 样品的制备 在肉桂醛生物转化后的以应液中加入等体积的无水乙醇，充分振荡混匀后，8 000 r/min离心20 min，取上清液稀释到一定浓度后用于紫外光谱的测定。 1.3.3 紫外光谱的采集 准确移取肉桂醇、肉桂醛和肉桂酸标准储备液0.05、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7、0.8、0.9 mL分别置于10 mL容量瓶中，无水乙醇作溶剂，配制成系列不同质量浓度的标准液。于200～400 nm波长范围内分别测定各组分的紫外吸收光谱。 1.4 数据处理将所测紫外光谱数据导出，然后采用Origin软件对数据作多阶求导处理。 2 结果与分析2.1 各组分检测波长的选择2.1.1 多组分紫外吸收光谱 将肉桂醇、肉桂醛、肉桂酸、培养液空白以及各组分的混合物进行紫外扫描，其紫外吸收光谱如图1所示。  图1 紫外吸收光谱
Fig. 1 UV absorption spectra
由图1可看出，以应体系中各组分的紫外吸收光谱相互之间均有部分重叠，难以分辨。 2.1.2 肉桂醛、肉桂酸检测波长的选择 紫外吸收光谱的导数光谱能够有效消除被测组分与共存组分因重叠所带来的吸收干扰。为此，对肉桂醇、肉桂醛、肉桂酸及培养液空白的紫外吸收光谱进行二阶求导得到相应的二阶导数光谱，如图2所示。 如果有一个人才德很出众，就可以实行君主政体；如果有某个家族的人们才德很出众，就可实行贵族政体。总之，这两个政体的根本原则是美德。但是，在现实生活中，才德远超众的人不容易出现，所以，这两类政体在现实中不太容易采用。而且，就君主一人统治而言，君主政体中的君主既才德超群，同时又能遵循法律；然而，一旦君主流于邪恶，而且听凭自己的私意独裁专制，就是暴君制。由于暴君们只从自己的私利出发，完全不顾及全体公民的利益，并且统治了比他更有才德的人，所以最终得不到大家的拥护，必定会灭亡。  图2 二阶导数光谱
Fig. 2 Second-order derivative spectra
由图2可看出，在230～400 nm波长范围内，培养液空白的吸光度二阶导数值为零，对样品中其余3 个组分肉桂醛、肉桂酸和肉桂醇的检测没有干扰。 在300～350 nm波长范围，进一步考察不同质量浓度肉桂酸、肉桂醛和肉桂醇3 个组分的二阶导数光谱图，如图3所示。 综上所述，随着我国现代化进程的不断加快，我国的教育事业也应与时俱进，利用现代化的教学工具，进行教学活动。教师在初中阶段语文学科的教学活动中，运用微课这一教学模式，能够有效激发初中学生学习语文知识的兴趣，构建和谐的语文课堂氛围，从而有利于学生全面发展。教师利用微课资源，进行设计教学的导入环节，这种教学资源，能有效的突破教学难点和重点，从而提高学生学习的效率。  图3 不同质量浓度下肉桂酸、肉桂醛和肉桂醇二阶导数光谱
Fig. 3 Second-order derivative UV spectra of cinnamaldehyde and cinnamic acid at different concentrations
由图3可知，在300～350 nm波长范围内，不同质量浓度肉桂醇的二阶导数值始终趋近于0，肉桂醇的紫外吸光度二阶导数值不会干扰肉桂醛和肉桂酸的测定；在306 nm波长处，不同质量浓度的肉桂醛二阶导数光谱都相交于一点，且该点的二阶导数值为零，因此，在306 nm波长处检测肉桂酸，其紫外吸收的二阶导数值不受肉桂醛的干扰，故选取306 nm作为肉桂酸的检测波长；在320 nm波长处，不同质量浓度肉桂酸所对应的吸光度趋于零，同理可选取320 nm作为肉桂醛的检测波长。 2.1.3 肉桂醇的检测波长的选择 由于培养液空白、肉桂醇、肉桂醛和肉桂酸的二阶导数光谱在200～300 nm波长范围内均有吸收，且吸收峰相互重叠，无法定量分析肉桂醇含量。因此，对4 种物质的紫外吸收光谱进行三阶求导，得到的三阶导数光谱如图4所示。 现代医院成本管理与医护人员的医疗行为密切相关，医护人员的经济利益与其服务的效率挂钩，所以，医护人员是直接、有效控制成本的关键点，强化医护人员成本效率观，是成本控制的重中之重，通过考核人均成本结余额、收入成本率，人均成本率来实现。科室是医院发展的基本单元，医院想要强化成本控制，就得提高各科室医护人员的积极性，全员参与，通过对项目成本和病种成本构成的宣传，学习培训，并将成本考核与绩效考核挂钩，引导医护人员节约耗材，主动控费，有效控制成本，提高成本效率，自觉规范诊疗行为，强化支出责任，通力合作，让成本控制管理工作得以持续。  图4 三阶导数光谱
Fig. 4 Third-order derivative UV spectra
由图4可知，在235～275 nm波长范围内，培养液空白、肉桂醛和肉桂酸的紫外吸收三阶导数值都趋于零，对肉桂醇的紫外吸收三阶导数值的测定无干扰，故实验选取干扰最小且有最大紫外吸收三阶导数值的256 nm作为肉桂醇的检测波长。 我们传统的德育课主要是以班团会、国旗下的讲话及大型集体集会的形式展开的，规模大，耗时多，效果并不明显，很多学生抱着“事不关己高高挂起”的心态。德育微课程由于“短小精悍”，其呈现形式自然也就灵活多样。活动呈现的时间可以是课堂、课外、德育教研活动、家长会、家校微课程。呈现的空间可以是教室、食堂、寝室、家庭。呈现的主体可以是班主任、老师、学生、学校社团、学校德育处团委等。 2.2 工作曲线线性回归方程按2.1.2节所述方法获得肉桂酸和肉桂醛的二阶导数光谱，分别选取肉桂酸在306 nm和肉桂醛在320 nm波长处的二阶导数值为定量指标，分别建立肉桂酸和肉桂醛的紫外吸收二阶导数值YII对质量浓度C（mg/L）的工作曲线的线性回归方程；按2.1.3节所述方法获得肉桂醇的三阶导数光谱，选取肉桂醇在256 nm波长处的三阶导数值为定量指标，建立肉桂醇的紫外吸收三阶导数值YIII对质量浓度C（mg/L）的工作曲线的线性回归方程，结果如表1所示。 李绍章等[17]研究结果显示，液体饲料发酵过程中大分子物质有所降解，消化率提高，与此同时，游离的糖、维生素和氨基酸等营养素容易损失。接种植物乳酸菌后液态发酵干物质损耗率低于自然发酵。 表1 线性回归方程、线性范围及相关系数
Table 1 Linear regression equations, linear ranges and correlation coefficients  组分 回归方程 线性范围/（mg/L） 相关系数肉桂醛 YII=3.8×10-4C-0.4×10-4 0.52～9.27 0.999 2肉桂酸 YII=5.1×10-4C-3.2×10-4 0.51～9.24 0.994 1肉桂醇 YIII=8.7×10-4C-0.8×10-4 0.55～5.47 0.999 9
2.3 精密度实验在低、中、高不同质量浓度范围内，取不同质量浓度的肉桂酸、肉桂醛和肉桂醇溶液各3 份。在306 nm和320 nm波长处分别测定肉桂酸和肉桂醛的吸光度二阶导数值，在256 nm波长处测定肉桂醇的吸光度三阶导数值，并分别计算测量结果的相对标准偏差（relative standard deviation，RSD），结果如表2所示，各组分的RSD（n=6）均不超过5%，具有良好的重复性。 表2 精密度测定（n=6）
Table 2 Precision of the presented method (n= 6)  组分 质量浓度/（mg/L） RSD/%肉桂醛1.03 3.8 4.12 3.5 8.24 3.8肉桂酸1.03 4.9 4.11 2.5 8.22 2.0肉桂醇1.09 2.1 2.19 3.0 4.38 4.0
2.4 回收率实验模拟肉桂醛转化体系，在培养液空白液中分别加入一定量的肉桂醛（3.78 mg/L）、肉桂酸（1.93 mg/L）、肉桂醇（2.16 mg/L），分别按低、中、高3 个质量浓度加入各组分的标准溶液进行测定，结果见表3。肉桂醛、肉桂酸和肉桂醇平均回收率分别为103.3%、104.1%和98.0%，RSD分别为4.1%、2.1%和3.5%。 表3 回收率测定（n=3）
Table 3 Recoveries of the method (n= 3)  组分 加入量/（mg/L）（mg/L）回收率/%平均回收率/%RSD/%测得量/2.04 5.79 98.5肉桂醛3.78 7.80 106.3 5.15 9.20 105.2 103.3 4.1 1.14 3.09 101.8肉桂酸1.93 3.98 106.2 3.08 5.14 104.2 104.1 2.1 1.07 3.25 101.9肉桂醇2.16 4.24 96.3 3.28 5.30 95.7 98.0 3.5
2.5 样品的测定按1.3.2节方法处理3 批不同质量浓度的样品，并按1.3.3节方法对样品进行紫外扫描和分析处理，平行测定6 次，结果如表4所示，其RSD（n=6）均小于4%，表明该方法稳定可靠。 表4 样品测定结果（n=6）
Table 4 Quantitative results for actual samples (n= 6)  样品 测得量/（mg/L） RSD/%肉桂醛4.81 3.4 5.77 2.1 7.36 3.7肉桂酸3.51 2.5 4.95 2.2 5.20 3.1肉桂醇1.22 1.9 2.64 2.7 4.12 3.8
3 结 论实验表明，通过对紫外吸收光谱进行数学变换为多阶导数光谱测定生物转化液中的肉桂醛、肉桂酸和肉桂醇，不仅能够消除在生物催化以应中的媒介（培养液空白）对样品测定的干扰，同时也能消除各组分样品相互影响所带来的测定误差。该方法操作简单、准确度高、适用性强，相比于传统的色谱法，避免了萃取、分离等繁琐操作以及价格昂贵、成本高、分析时间过长所带来的不便，适合频繁和大量的前期筛菌工作的测量，能够广泛使用。 参考文献： [1] 国家卫生和计划生育委员会. 食品用香料通则: GB 29938—2013[S]. 北京: 中国标准出版社, 2014: 1. [2] The Council of the European Communities. Council directive 88/388/EEC on the approximation of the laws of the Member States relating to flavourings for use in foodstuffs and to source materials for their production[S]. Official Journal L 184, 1988: 61-67. [3] U.S. Food & Drug Administration. 21 CFR 101.22-Foods; labeling of spices, flavorings, colorings and chemical preservatives[S]. SuDoc Class Number: AE 2.106/3:21, 2000. [4] BERGER R G. Biotechnology as a source of natural volatile flavours[J]. Current Opinion in Food Science, 2015, 1: 38-43.DOI:10.1016/j.cofs.2014.09.003. [5] LAMBERT F, ZUCCA J, NESS F, et al. Production of ferulic acid and coniferyl alcohol by conversion of eugenol using a recombinant strain of Saccharomyces cerevisiae[J]. Flavour Fragrance, 2014, 29: 14-21.DOI:10.1002/ffj.3173. [6] SHARAF O M, EL-SHAFIE K, IBRAHIM G A, et al. Isolation,identification and selection of lactic acid bacteria cultures for production of food aroma & flavour compounds[J]. Australia Journal of Basic and Applied Sciences, 2012, 6: 183-203. [7] 孙宝国, 何坚. 香料化学与工艺学[M]. 2版. 北京: 化学工业出版社,2004: 88. [8] 高爽, 颜见标, 丛德全, 等. Sn改性的Ru/H-CMK-3催化剂的制备及其肉桂醛选择性加氢性能的研究[J]. 物理化学学报, 2015, 31(7):1391-1398. DOI:10.3866/PKU.WHXB201504303. [9] ZHANG Y, ZHANG S, PAN X, et al. Selective hydrogenation of cinnamaldehyde to cinnamyl alcohol over Au catalysts: influence of the oxide-supports[J]. Catalysis Letters, 2017, 147: 102-109.DOI:10.1007/s10562-016-1901-8. [10] 张笮晦, 邓家刚, 唐彩云. 肉桂叶生物转化制备肉桂醇[J]. 应用化工, 2016, 45(5): 882-885; 889. DOI:10.16581/j.cnki.issn1671-3206.20160202.030. [11] 刘斌, 李子院, 韩文, 等. 肉桂内生细菌转化肉桂醛的研究[J].食品研究与开发, 2016(12): 151-155. DOI:10.3969/j.issn.1005-6521.2016.12.035. [12] 马丽, 刘雄民, 韦一萍. Mucor sp. JX23发酵液生物催化肉桂醛选择加氢制肉桂醇[J]. 化工进展, 2009, 37(8): 1431-1434. DOI:10.3321/j.issn:1000-6613.2009.08.028. [13] 韦一萍, 张戈. 以相高效液相色谱法同时测定桂油生物催化以应中肉桂醇、苯甲醛、苯乙酮、肉桂酸和肉桂醛[J]. 应用化工, 2011,40(11): 2034-2037. DOI:10.16581/j.cnki.issn1671-3206.2011.11.034. [14] 邹盛勤, 姜琼, 周伟华. RP-HPLC同时测定不同产地肉桂中5 种成分的含量[J]. 光谱实验室, 2013, 30(4): 1599-1602. DOI:10.3969/j.issn.1004-8138.2013.04.016. [15] 刘威, 李家春, 胡军华, 等. 桂枝水提液全时段双波长融合高效液相色谱指纹图谱研究及6 个成分定量分析[J]. 药物分析杂志, 2014,34(6): 1043-1048. DOI:10.16155/j.0254-1793.2014.06.009. [16] 谢倩, 王威, 陈清西. 橄榄多酚含量测定方法的比较[J]. 食品科学,2014, 35(8): 204-207. DOI:10.7506/spkx1002-6630-201408040. [17] 徐礼生, 高贵珍, 曹稳根, 等. 紫外分光光度法快速测定发酵液中的L-色氨酸[J]. 分析实验室, 2014, 33(6): 675-677. DOI:10.13595/j.cnki.issn1000-0720.2014.0158. [18] 黄晓东, 陶然, 徐强. 紫外分光光度法测定饮用纯净水中邻苯二甲酸二己酯含量[J]. 食品科学, 2012, 33(16): 237-240. [19] ANKUSH P, SHWETA S. Derivative UV-Vis absorption spectra as an invigorated spectrophotometric method for spectral resolution and quantitative analysis: theoretical aspects and analytical applications:a review[J]. Trends in Analytical Chemistry, 2016, 77: 44-53.DOI:10.1016/j.trac.2015.12.004. [20] OJEDA C B, ROJAS F S. Recent applications in derivative ultraviolet/visible absorption spectrophotometry: 2009-2011: a review [J]. Microchemical Journal, 2013, 106: 1-16. DOI:10.1016/j.microc2012.05.012. [21] POPOVIC G V, PFENDT L B, STEFANOVIC V M. Analytical application of derivative spectrophotometry[J]. Journal of the Serbian Chemical Society, 2000, 65(7): 457-472. DOI:10.2298/jsc0007457p. [22] 丁家梅, 杨圣, 陆霄雄, 等. 导数光谱多组分标定法对阿司匹林、扑热息痛及水杨酸的同时测定[J]. 分析测试学报, 2011, 30(6): 612-617; 623. DOI:10.3969/j.issn.1004-4957.2001.06.004. [23] 邵建群, 徐艳霞, 唐静成, 等. 紫外二阶导数光谱法监测柠檬酸催化合成乙酰水杨酸[J]. 首都医科大学学报, 2015, 36(5): 757-760.DOI:10.3969/j.issn.1006-7795.2015.05.018. [24] 郭鸿宜, 陈康. 二阶导数光谱法测定不同产地草麻黄中总生物碱的含量[J]. 中药材, 2004(10): 738-739. DOI:10.13863/j.issn1001-4454.2004.10.016. [25] FATMA A A, NAHED E, HEBA E, et al. Simultaneous determination of cetirizine, phenyl propanolamine and nimesulide using third derivative spectrophotometry and high performance liquid chromatography in pharmaceutical preparations[J]. Chemistry Central Journal, 2017, 11(1): 1-11. DOI:10.1186/s13065-017-0326-9. [26] 王怀友, 惠秋莎, 刘连栋, 等. 二阶导数荧光分光光度法同时测定色氨酸和酪氨酸[J]. 光谱学与光谱分析, 2000, 20(3): 427-430.DOI:10.3321/j.issn:1000-0593.2000.03.057. [27] 韩彬彬, 金嘉敏, 吴秋燕, 等. 高阶导数光谱法检测番茄红素中掺有的苏丹红含[J]. 药物分析杂志, 2009, 29(5): 710-713. DOI:10.16155/j.0254-1793.2009.05.003. [28] 吴海燕, 袁秋梅. 导数光谱法快速测定蚕蛹中的多糖含量[J].江苏农业科学, 2015, 43(4): 309-311. DOI:10.15889/j.issn.1002-1302.2015.04.111. [29] 王静敏, 张景超, 张尊举. 二阶导数光谱法快速测定硝酸盐氮和亚硝酸盐氮[J]. 光谱学与光谱分析, 2019, 39(1): 161-165.DOI:10.3964/j.issn.1000-0593(2019)01-0161-05. [30] STOLARCZYK M, APOLA A, MALANKA A, et al. Determination of sotalol, oxprenolol and labetalol in binary mixtures and in spiked human serum by derivative spectrometric method[J]. Acta Poloniae Pharmaceutica, 2017, 74(1): 93-102.
Rapid Determination of Cinnamyl Alcohol, Cinnamaldehyde and Cinnamic Acid in Bioconversion Products by Multiorder Derivative Ultraviolet Spectrometry JIANG Yanyan1, SU Guijiao2, MA Li1,*, HUANG Qiurong1, YU Chang1, LI Lili1
(1. School of Chemistry & Chemical Engineering, Guangxi University, Nanning 530004, China;2. School of Life Science & Technology, Guangxi University, Nanning 530004, China) Abstract: To efficiently select microbial strains capable of biotransforming cinnamaldehyde into cinnamyl alcohol, a new method for the rapid determination of cinnamyl alcohol, cinnamaldehyde and cinnamic acid in the biotransformation products of cinnamaldehyde was established using multi-order derivative ultraviolet (UV) spectrometry. Based on their second (for cinnamaldehyde and cinnamic acid) or third (for cinnamyl alcohol) order derivative UV absorption spectra, 320,306 and 256 nm were selected as suitable wavelengths for determination of cinnamaldehyde, cinnamic acid and cinnamyl alcohol, respectively. Good linearity was observed in the concentration range of 0.52-9.27, 0.51-9.24 and 0.55-5.47 mg/L for the three compounds, respectively. Their average recoveries were 103.3%, 104.1% and 98.0% with relative standard deviations (RSDs) of 4.1%, 2.1% and 3.5% (n = 3), respectively. The measurement could be carried out on samples after dilution without extraction or separation, which could be used for rapid screening for strains capable of biotransforming cinnamaldehyde into cinnamyl alcohol. Keywords: multi-order derivative ultraviolet spectrometry; cinnamaldehyde; cinnamyl alcohol; cinnamic acid;biotransformation
收稿日期：2019-05-08 基金项目：国家自然科学基金青年科学基金项目（21502027）；广西自然科学基金项目（2016GXNSFAA380304） *通信作者简介：马丽（1971—）（ORCID: 0000-0002-1399-7570），女，高级工程师，博士，研究方向为天然香精香料的生物转化及产物分析。E-mail: gxumali@126.comDOI:10.7506/spkx1002-6630-20190508-063 中图分类号：O657.32；TS202.3 文献标志码：A 文章编号：1002-6630（2020）10-0180-05 引文格式： 江艳艳, 粟桂娇, 马丽, 等. 多阶导数紫外光谱法快速测定生物转化液中的肉桂醇、肉桂醛和肉桂酸[J]. 食品科学,2020, 41(10): 180-184. DOI:10.7506/spkx1002-6630-20190508-063. http://www.spkx.net.cnJIANG Yanyan, SU Guijiao, MA Li, et al. Rapid determination of cinnamyl alcohol, cinnamaldehyde and cinnamic acid in bioconversion products by multiorder derivative ultraviolet spectrometry[J]. Food Science, 2020, 41(10): 180-184.(in Chinese with English abstract) DOI:10.7506/spkx1002-6630-20190508-063. http://www.spkx.net.cn
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发表于 2021-2-10 10:49:26
