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亚麻籽油对链脲佐菌素诱导大鼠糖尿病肾病的保护作用

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发表于 2021-1-29 20:23:35 | 显示全部楼层 |阅读模式
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亚麻籽油对链脲佐菌素诱导大鼠糖尿病肾病的保护作用
牛佳卉,付梦琪,周 茜,王亚旭,吴梦颖,赵 文*,王 颉
(河北农业大学食品科技学院,河北省农产品加工工程技术中心,河北 保定 071001)
摘 要:目的:研究亚麻籽油对链尿佐菌素(streptozocin,STZ)诱导的大鼠糖尿病肾病(diabetic nephropathy,DN)保护作用,并与鱼油对比功效。方法:采用一次性腹腔注射STZ的方法建立大鼠糖尿病肾病的模型,将实验大鼠分为阴性对照组、模型组、3 个亚麻籽油剂量组(0.3、0.6、0.9 mL/100 g mb)、鱼油组(0.6 mL/100 g mb),研究亚麻籽油和鱼油对大鼠空腹血糖、糖耐量、糖化血清蛋白等糖代谢相关指标,尿量、尿蛋白、肌酐、尿素氮等肾功能指标,以及对细胞炎症因子和氧化应激的影响;并观察胰腺和肾脏的组织形态变化。结果:与模型组相比,亚麻籽油和鱼油均能显著性地降低STZ诱导的糖尿病肾病大鼠的空腹血糖值,改善糖耐量和糖化血清蛋白,降低尿量和尿蛋白,改善肾功能,降低机体的炎症反应,并增强抗氧化能力,显著性升高血清中葡萄糖转运蛋白4、胰岛素和肝脏中丙酮酸激酶、己糖激酶的表达(P<0.05或P<0.01)。亚麻籽油能够改善DN大鼠胰脏、肾脏组织结构损伤。结论:亚麻籽油和鱼油对STZ诱导的DN均有一定的保护作用。其作用机制可能与调节糖代谢、抗炎能力以及抗氧化有关。在调节糖代谢上鱼油的效果较好,而亚麻籽油对肾脏保护作用效果更好。
关键词:亚麻籽油;链脲佐菌素;糖尿病肾病;保护作用
糖尿病肾病(diabetic nephropathy,DN)是糖尿病首要的微血管并发症[1],是导致终末期肾衰竭常见病因[2],其主要病变包括基底膜增厚、系膜弥漫性增生、肾间质纤维化以及足细胞病变[3]。在其发病过程中常伴有蛋白尿、血压偏高,机体肿胀导致的水肿、肾功能衰退等问题,且发病率逐年增高[4]。DN的发病机制十分复杂,多种因素相互作用,其中包括血糖和血脂代谢紊乱、免疫功能低下、血管内皮功能障碍、氧化应激损伤和细胞凋亡等因素[5]。
由于人民生活水平提高、饮食结构不断发生调整、生活节奏的加快以及各种环境因素的影响,糖尿病在全球发病率逐年上升,且逐渐低龄化。国际糖尿病联盟官网公布[6],2017年全球糖尿病患者已经达到4.25亿,其中30%~40%发展成糖尿病肾病,并且最终可能会导致人体的肾功能衰竭[2]。目前还未研究出来能够根治糖尿病的治疗方法,而良好的饮食是预防糖尿病及延缓诱发糖尿病肾病的重要保障,因此,人通过膳食对糖尿病进行防控具有重要意义。
亚麻籽又称胡麻籽,富含α-亚麻酸以及亚麻胶、木酚素等功能性成分[7]。亚麻籽油是亚麻籽经提炼所获取的油类产物,不饱和脂肪酸通常60%之上,主要是α-亚麻酸和亚油酸[8-10],其中α-亚麻酸可在体内转化为二十碳五烯酸(eicosapentaenoic acid,EPA)和二十二碳六烯酸(docosahexaenoic acid,DHA)(鱼油有效成分),所以被人们称为“陆地上的鱼油”。研究表明,亚麻籽油中这些不饱和脂肪酸有多种益用,包括降低胆固醇血脂[11-13]、抗肿瘤、护眼健脑益智[14-16]、抗炎抗病毒[17]等功效。故本实验通过观察亚麻籽油对由链尿佐菌素(streptozocin,STZ)诱导的糖尿病肾病大鼠的影响,探究其保护作用,从调节糖代谢途径和抗氧化途径初探其保护作用机制,并与鱼油进行对比,评价亚麻籽油能否对糖尿病肾病大鼠起到缓解症状的作用,以期进一步研究其营养功能价值,为亚麻籽和亚麻籽油的合理开发应用提供实验依据。
1 材料与方法
1.1 动物、材料与试剂
SD雄性大鼠,SPF级,体质量(160~180)g,购自北京维通利华公司,生产许可证号:SCXK(京)2016-0006。
冷榨亚麻籽油(α-亚麻酸质量分数56%) 锡林郭勒盟红井源油脂有限责任公司;鱼油软胶囊(EPA含量18.3 g/100 g DHA含量12 g/100 g) 汤臣倍健股份有限公司。
链脲佐菌素(streptozocin,STZ) 美国Sigma公司;蛋白定量试剂盒(考马斯亮蓝法)、糖化血清蛋白(glycated serum protein,GSP)、丙酮酸激酶(pyruvate kinase,PK)、己糖激酶(hexokinase,HK)、丙二醛(maleic dialdehyde,MDA)、还原型谷胱甘肽(glutathione,GSH)、超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)、尿素氮(blood urea nitrogen,BUN)、肌酐(creatinine,CRE)、尿蛋白试剂盒南京建成生物工程研究所;葡萄糖转运蛋白4(glucose transporter-4,GLUT-4)、胰岛素(insulin,INS)、晚期糖基化终末产物(advanced glycation end products,AGEs)试剂盒 上海源叶生物科技有限公司;白细胞介素6(interleukin-6,IL-6)、肿瘤坏死因子α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)、转化生长因子β1(transforming growth factor-β1,TGF-β1) 武汉博士德生物工程有限公司。
1.2 仪器与设备
1500-823型酶标仪、902-ULTS型超低温冰箱(-80 ℃)美国Thermo Scientific公司;组织切片机浙江金华华海科教仪器厂;微量手动移液器 德国Eppendorf公司;IID型超声细胞破碎仪 宁波新芝生物科技股份有限公司;ECLIPSE E100型生物显微镜日本Nikon公司;血糖仪 艾科来国际贸易有限公司。
1.3 方法
1.3.1 动物模型的建立及分组
糖尿病肾病大鼠建模[18-19]:SD大鼠经适应性饲养后,分出10 只大鼠作为阴性对照组,其余禁食不禁水12 h进行造模。造模方法为将STZ溶于pH 4.5的0.l mol/L柠檬酸-柠檬酸钠缓冲液中,一次性腹腔注射60 mg/kg STZ,阴性对照组在相同条件下腹腔注射同剂量柠檬酸-柠檬酸钠缓冲液。72 h后取尾血,选取血糖值不低于16.7 mmol/L的大鼠为模型动物。
剂量设计:以预实验中亚麻籽油的最佳有效剂量作为中剂量,在此基础上以3为倍数设计低、高剂量。
分组:选取血糖值不低于16.7 mmol/L的模型大鼠随机分为5 组,每组10 只,分别为模型组、亚麻籽油低(0.3 mL/100 g mb)、中(0.6 mL/100 g mb)、高(0.9 mL/100 g mb)剂量组和鱼油组(0.6 mL/100 g mb)。连续灌胃30 d,阴性对照组和模型组灌胃蒸馏水。每周记录体质量,并观察其生长情况。每周尾静脉采血,测空腹血糖值(空腹10 h)。
1.3.2 动物处理及样本的采集
第30天大鼠单笼饲养,禁食不禁水,收集24 h尿液。记录尿量,离心取上清液,4 ℃保存待测。后麻醉动物,腹主动脉取血后处死,分离血清,-80 ℃冷冻备用。分离胰腺、肾脏、肝脏和睾丸并称质量。取右侧肾脏和肝脏分别制成质量分数10%肾组织匀浆液和肝组织匀浆,3 000 r/min离心5 min取上清液待测。将左侧肾脏、胰腺于10%的甲醛溶液中固定,进行病理组织形态学检查。
1.3.3 测定指标
1.3.3.1 脏器指数
采用1.3.2节中禁食后的大鼠,肝脏、胰脏和睾丸的脏器指数分别按式(1)~(3)计算。

1.3.3.2 空腹血糖、糖耐量及血糖曲线下面积
空腹血糖:每周大鼠空腹尾静脉取血,血糖仪测血糖[20]。
糖耐量:取尾血,测定空腹血糖[20]。给予大鼠葡萄糖溶液2 g/kg mb,测定各组0、0.5、1、2 h的血糖值,计算各时间血糖面积,血糖曲线下面积按式(4)计算。

1.3.3.3 血清生化指标
取血清,严格按照试剂盒说明书测定GSP、GLUT4、INS、AGEs、TNF-α、IL-6、SOD、MDA、GSH水平。
1.3.3.4 肝组织中生化指标的测定
取肝匀浆,严格按照试剂盒说明书测定HK、PK的活力。
1.3.3.5 肾功能指标的测定
严格按照试剂盒说明书测尿蛋白、CRE和血清BUN水平。
1.3.3.6 肾组织中生化指标的测定
取肾匀浆,严格按照试剂盒说明书测TNF-α、TGF-β1、SOD、MDA、GSH水平。
1.3.3.7 胰腺、肾脏病理组织学检查
将固定好的胰腺、肾脏,经脱水、浸蜡、石蜡包埋、石蜡切片、苏木精-伊红(hematoxylin-eosin,HE)染色后,制备组织切片,光学显微镜观察。
1.4 统计学分析
实验数据采用统计软件SPSS 17.0进行分析。数据结果用平均值±标准差表示。组间比较采用单因素方差分析法:P<0.05,表示显著差异;P<0.01,表示极显著差异。
2 结果与分析
2.1 亚麻籽油对STZ诱导的DN大鼠体质量和脏器指数的影响

图 1 亚麻籽油对STZ诱导的DN大鼠体质量的影响
Fig. 1 Effect of flaxseed oil on body mass in STZ-induced DN rats
由图1可知,阴性对照组大鼠,体质量稳定增加。另外几组DN大鼠在灌胃前体质量明显下降,且与阴性对照组比较有极显著性差异(P<0.01);灌胃前各造模组体质量均无显著差别(P>0.05)。连续灌胃4 周后,模型组、亚麻籽油低剂量组的体质量会随着灌胃时间的延长而减少,中剂量组、高剂量组和鱼油组的体质量与时间呈正相关,从灌胃第一周起就极显著高于模型组同期的体质量(P<0.01)。
表 1 亚麻籽油对STZ诱导DN大鼠脏器指数的影响

注:与阴性对照组比较,*.差异显著(P<0.05),**.差异极显著(P<0.01);与模型组比较,#.差异显著(P<0.05),##.差异极显著(P<0.01)。下同。
由表1可知,与阴性对照组比,模型组肝脏指数极显著增加(P<0.01),其余指数无显著性差异(P>0.05)。与模型组比,各干预组肾脏指数有所恢复(P<0.05),高剂量缓解效果更佳;各干预组肝脏指数亦均有不同程度的恢复,其中高剂量组恢复极显著(P<0.01),中剂量组与鱼油组差异显著(P<0.05)。胰脏和性腺指数均无显著性差异(P>0.05)。
2.2 亚麻籽油对STZ诱导的DN大鼠空腹血糖值、糖耐量和血糖曲线下面积的影响

图 2 亚麻籽油对STZ诱导的DN大鼠空腹血糖的影响
Fig. 2 Effect of flaxseed oil on fasting blood glucose in STZ-induced DN rats
图2结果表明,模型组每周空腹血糖值均明显高于阴性对照(P<0.01),说明造模成功。各干预组大鼠每周的空腹血糖均极显著低于模型组(P<0.01)。

图 3 亚麻籽油对STZ诱导的DN大鼠糖耐量的影响
Fig. 3 Effect of flaxseed oil on glucose tolerance in STZ-induced DN rats

图 4 亚麻籽油对STZ诱导的DN大鼠血糖曲线下面积的影响
Fig. 4 Effect of flaxseed oil on area under the glycemic curve in STZ-induced DN rats
由图3、4可知,灌给葡萄糖后各剂量组大鼠血糖值和血糖曲线下面积均极显著低于模型组(P<0.01),说明各剂量组与鱼油组具有缓解血糖升高的作用。
2.3 亚麻籽油对STZ诱导的DN大鼠血清生化指标的影响
表 2 亚麻籽油对STZ诱导的DN大鼠血清中GSP、GLUT4、AGEs和INS水平的影响
Table 2 Effect of flaxseed oil on GSP, GLUT4, AGEs and INS levels in serum of STZ-induced DN rats

由表2可知,与阴性对照组比较,模型组大鼠的GSP和AGEs水平极显著增加(P<0.01)。与模型组相比,亚麻籽油除高剂量组外,各剂量组大鼠GSP浓度显著减少(P<0.05,P<0.01),高剂量组虽有下降但无显著差异(P>0.05);各干预组AGEs质量浓度都极显著降低(P<0.01),高剂量组降低效果最好。各剂量组GLUT4和INS水平均明显回升(P<0.05,P<0.01),其中,中剂量组比其余组效果更好。

图 5 亚麻籽油对STZ诱导的DN大鼠血清中TNF-α(A)、IL-6(B)质量浓度的影响
Fig. 5 Effect of flaxseed oil on serum TNF-α (A) and IL-6 (B) levels in STZ-induced DN rats
由图5可知,与阴性对照组比,模型组的大鼠血清中TNF-α和IL-6质量浓度明显增加(P<0.05,P<0.01)。与模型组比,各干预组大鼠血清TNF-α质量浓度极显著减少(P<0.01);各剂量组IL-6质量浓度显著恢复(P<0.05,P<0.01),中剂量组恢复效果优于低、高剂量组,但不及鱼油组。亚麻籽油中剂量组比鱼油组恢复效果好。
表 3 亚麻籽油对STZ诱导的DN大鼠血清中SOD、MDA、GSH水平的影响
Table 3 Effect of flaxseed oil on serum SOD, MDA and GSH levels in STZ-induced DN rats

由表3可知,与阴性对照组比,模型组大鼠SOD活力和GSH浓度显著性降低(P<0.01,P<0.05),MDA浓度显著性增加(P<0.05)。与模型组比,各干预组均能极显著性升高SOD活力(P<0.01),GSH浓度亚麻籽油高剂量显著性增加(P<0.05),其余各干预组无差异(P>0.05)。而MDA浓度除亚麻籽油低剂量组无差异(P>0.05),其余各组均显著性降低(P<0.05)。对于抗氧化物的影响,亚麻籽油优于鱼油组。
2.4 亚麻籽油对STZ诱导的DN大鼠肝组织中PK、HK活力的影响
表 4 亚麻籽油对STZ诱导的DN大鼠肝组织中PK、HK活力的影响
Table 4 Effect of flaxseed oil on PK and HK activity in liver tissue of STZ-induced DN rats

由表4可见,与阴性对照组比,模型组大鼠的PK、HK活性皆有极显著差异(P<0.01)。与模型组比,亚麻籽油各剂量组和鱼油组的PK、HK的活性均明显升高(P<0.01,P<0.05),其中低剂量组调节PK活性的效果低于中、高剂量组和鱼油组。亚麻籽油调节效果优于鱼油。
2.5 亚麻籽油对STZ诱导的DN大鼠肾功能的影响
由表5可知,与阴性对照组比,模型组大鼠的尿蛋白和24 h尿量均极显著增加(P<0.01),说明糖尿病肾病模型建模成功。与模型组比,各剂量组大鼠的尿蛋白含量和24 h尿量均极显著降低(P<0.01),并且尿蛋白含量具有剂量依赖性关系。亚麻籽油的护肾功效优于鱼油。
表 5 亚麻籽油对STZ诱导的DN大鼠尿蛋白浓度及尿量的影响
Table 5 Effect of flaxseed oil on urine protein and urine volume in STZ-induced DN rats

表 6 亚麻籽油对STZ诱导的DN大鼠肾功能的影响
Table 6 Effect of flaxseed oil on renal function of STZ-induced DN rats

由表6可知,与阴性对照组比,其余各组大鼠的BUN和CRE浓度明显升高(P<0.01)。与模型组比,各剂量组大鼠BUN浓度明显降低(P<0.01),CRE浓度也明显降低(P<0.05,P<0.01),但鱼油组效果更优。与鱼油组比,亚麻籽油中剂量组大鼠的BUN浓度更低,而CRE浓度较高。
2.6 亚麻籽油对STZ诱导的DN大鼠肾组织中炎症和氧化相关因子的影响
表 7 亚麻籽油对STZ诱导的DN大鼠肾组织中TNF-α、TGF-β1质量浓度的影响
Table 7 Effect of flaxseed oil on TNF-αand TGF-β1 in kidney tissue of STZ-induced DN rats

由表7可知,与模型组比,亚麻籽油中剂量组的TNF-α质量浓度显著减少(P<0.05),其余剂量组无显著性差异(P>0.05);而各剂量组TGF-β1的质量浓度极显著降低(P<0.01)。与鱼油组比,亚麻籽油中剂量组的TNF-α和TGF-β1的质量浓度低,效果好。
由表8可知,与模型组比,各剂量组SOD的活力明显升高(P<0.01)而高剂量组比其余组表现较优,除鱼油组GSH的含量无显著性变化(P>0.05),各剂量组则极显著增加(P<0.01),中剂量组GSH含量提升最高。MDA含量显著下降(P<0.05,P<0.01),与剂量呈负相关,鱼油组含量低于剂量组,表现较优。
表 8 亚麻籽油对STZ诱导的DN大鼠肾组织中SOD、MDA、GSH水平的影响
Table 8 Effect of flaxseed oil on SOD, MDA and GSH in kidney tissue of STZ-induced DN rats

注:与鱼油组比较,&.差异显著(P<0.05),&&.差异极显著(P<0.01)。
2.7 亚麻籽油对STZ诱导的DN大鼠胰腺和肾脏病理组织形态的影响

图 6 胰腺病理切片(400 ×)
Fig. 6 Pathologic observation of pancreatic tissue (400 ×)
由图6可知,阴性对照组大鼠的胰岛形态正常、细胞饱满。模型组大鼠胰岛发生严重萎缩变形,细胞形状不规则,细胞大量减少并且肿大,胞浆出息空泡样变化。与模型组相比,亚麻籽油各剂量组及鱼油组大鼠胰岛的萎缩程度不严重,细胞数量多,形态较饱满。其中亚麻籽油高剂量组与鱼油组细胞数目及形态与阴性对照组基本无差别,效果相同。


图 7 肾脏病理切片(400 ×)
Fig. 7 Pathologic observation of kidney tissue (400 ×)
由图7可知,阴性对照组大鼠肾小球的大小、形态正常。模型组大鼠肾小球体积明显增大,肾小管的上皮细胞发生严重的空泡样变化,结构不规则,系膜细胞变多,基底膜变厚,而且间质出现有炎症细胞浸润。亚麻籽油低剂量组大鼠上皮细胞出现明显的空泡,肾小球上系膜细胞同样变多,但严重程度不如模型组;亚麻籽油中、高剂量组以及鱼油组肾小球体积比模型组要小,上皮细胞空泡变性没有模型组严重,系膜细胞比模型组薄。与鱼油组比,亚麻籽油中剂量组的肾小球大小、形态更接近于正常。
3 讨 论
DN是糖尿病慢性微血管并发症,是导致终末期肾衰竭常见病因[21]。其肾脏的病理表现为三高状态,即:对肾小球的压力增大、灌注增高,使其处于高负荷工作的状态,造成机体异常。且据文献报道,2型糖尿病患者随病程的发展,胰岛B细胞显著减少,胰岛及外分泌腺萎缩,B细胞功能衰竭[22-23]。本研究发现亚麻籽油对肾脏、胰脏病变均有一定程度减轻,证明亚麻籽油能够在一定程度上缓解DN大鼠肾损伤情况。
DN发病历程中尿量、空腹血糖和糖耐量是其首要的检测指标。在其发病期间若尿液中的蛋白含量只高不降,就会导致病情恶化,最终发展成肾衰竭,给人造成不可逆的伤害[24]。并且DN在临床上主要特征为肾功能改变,血清肌酐与尿素氮是肾功能临床检测指标。通过实验结果,可发现亚麻籽油能一定程度上控制DN大鼠血糖水平,能显著降低其尿蛋白、CRE、BUN浓度和尿量。并且发现亚麻籽油比鱼油在降低尿量、尿蛋白和BUN浓度方面的能力更强。但在降糖效果和降CRE含量方面不及鱼油组。说明亚麻籽油对糖尿病引起的肾脏病变有一定的修复作用。
糖代谢紊乱是DN的最重要的病理生理学特征,会引起的肾脏血流动力学的改变,通过多种信号通路、氧化应激等途径损伤肾脏,以及生长因子和细胞因子的多重作用,使TGF-β1的含量升高,导致肾脏纤维化的发生[25]。国内外研究[26-29]证实通过抑制糖基化反应,减少AGEs生成,增强PK、HK的活性,调节糖酵解进程,能显著延缓DN的进程。本结果表明,亚麻籽油能够有效地提高GLUT4、INS、PK、HK水平,降低GSP、AGEs、和TGF-β1、TNF-α、IL-6水平。说明亚麻籽油改善DN大鼠的糖代谢异常状态,降低血糖水平,推断出其可能通过增强胰岛素的敏感性,改善机体胰岛素的分泌,或通过糖代谢途径协同细胞因子的调节作用,减轻STZ诱导损伤。综合比较,鱼油具有较好的调节糖代谢的作用。
正常状况下,机体内的自由基处于平衡状态,这种平衡依赖于自身完整的抗氧化酶系统[30]。而在糖尿病状况下,肾脏中的葡萄糖能够自行氧化分解,产生过多氧自由基[31]。这些增多的氧自由基,会通过作用于蛋白质、脂类和核酸等生物分子来进行消耗,造成肾脏损伤[32]。本实验从血清和肾脏两个角度对SOD、MDA和GSH水平进行检测分析,结果发现,亚麻籽油能够提高DN大鼠的SOD、GSH水平,同时减少MDA的含量,其抗氧化效果略好于鱼油。表明亚麻籽油及鱼油能够增强糖尿病肾病大鼠的胰岛素敏感并缓解糖尿病肾病的损伤,具有较为明显的抗氧化作用。
综上所述,亚麻籽油能够控制STZ诱导的DN大鼠空腹血糖值,抑制肾脏肥大,降低尿蛋白的含量,具有显著降糖和护肾的功能。本实验初步确定其作用机制是通过改善DN大鼠的糖代谢紊乱,调节糖酵解反应,增强糖代谢的水平,并降低引起肾脏病变的炎症因子的表达,增加机体的抗氧化能力,来起到护肾作用,具体机制还需进一步探讨。
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Protective Effect of Flaxseed Oil on Diabetic Nephropathy Induced by Streptozocin in Rats
NIU Jiahui, FU Mengqi, ZHOU Qian, WANG Yaxu, WU Mengying, ZHAO Wen*, WANG Jie
(Hebei Agricultural Product Processing Engineering Technology Center, College of Food Science and Technology,Hebei Agricultural University, Baoding 071001, China)
Abstract: Objective: To explore the protective effect of flaxseed oil in comparison with fish oil on streptozotocin (STZ)-induced diabetic nephropathy (DN) in rats. Methods: An animal model of DN was established by a single intraperitoneal injection of STZ in rats. The experimental rats were divided into one negative control group, one model group, three flaxseed oil groups (0.3, 0.6, and 0.9 mL/100 g mb), and one fish oil group (0.6 mL/100 g mb). Glucose metabolism indexes including fasting blood glucose, glucose tolerance and glycosylated serum protein (GSP), renal function indexes including urine volume, urine protein, creatinine and urea nitrogen, as well as cytokines and oxidative stress status were determined in all the animals. Histological changes of pancreas and kidney tissues were observed. Results: Compared with the model group, flaxseed oil and fish oil could significantly reduce fasting blood glucose level, improve glucose tolerance and GSP,decrease urine volume and urine protein, improve renal function and reduce inflammatory reactions. Both of them could enhance antioxidant capacity and significantly increase the expression of glucose transporter-4, insulin, pyruvate kinase and hexokinase in liver (P < 0.05 or P < 0.01). Moreover, histopathological observation showed that flaxseed oil could alleviate pancreas and kidney injury in DN rats. Conclusion: Both flaxseed oil and fish oil have a protective effect on STZ-induced DN. The underlying mechanism may be related to the regulation of glucose metabolism, and the anti-inflammatory and antioxidant capacity. Comparatively, fish oil is more effective in regulating carbohydrate metabolism, while flaxseed oil has a better protective effect on the kidney.
Keywords: flaxseed oil; streptozotocin; diabetic nephropathy; protective effect
引文格式:2018-12-19
基金项目:“十三五”国家重点研发计划重点专项(2018YFD0901004);河北省食品科学与工程学科“双一流”建设资金项目(2016SPGCA18);河北省现代农业产业技术体系生猪创新团队项目(HBCT2018110205)
第一作者简介:牛佳卉(1994—)(ORCID: 0000-0003-1655-4203),女,硕士研究生,研究方向为食品营养。E-mail: 13191716382@163.com
*通信作者简介:赵文(1964—)(ORCID: 0000-0003-1717-1933),女,教授,硕士,研究方向为食品营养。E-mail: 13582820221@163.com
DOI:10.7506/spkx1002-6630-20181219-227
中图分类号:R151.2
文献标志码:A
文章编号:1002-6630(2020)03-0120-07
引文格式:牛佳卉, 付梦琪, 周茜, 等. 亚麻籽油对链脲佐菌素诱导大鼠糖尿病肾病的保护作用[J]. 食品科学, 2020, 41(3): 120-126.DOI:10.7506/spkx1002-6630-20181219-227. http://www.spkx.net.cn
NIU Jiahui, FU Mengqi, ZHOU Qian, et al. Protective effect of flaxseed oil on diabetic nephropathy induced by streptozocin in rats[J]. Food Science, 2020, 41(3): 120-126. (in Chinese with English abstract) DOI:10.7506/spkx1002-6630-20181219-227.http://www.spkx.net.cn
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