射流空化对大豆分离蛋白-磷脂酰胆碱乳化特性的影响

奥鹏网院作业

射流空化对大豆分离蛋白-磷脂酰胆碱乳化特性的影响
田 甜1，江中洋1，王中江1，李 杨1,2，李 良1,*
（1.东北农业大学食品学院，黑龙江 哈尔滨 150030；2.哈尔滨食品产业研究院，黑龙江 哈尔滨 150028）
摘 要：为探究射流空化对大豆分离蛋白（soy protein isolates，SPI）-磷脂酰胆碱（phosphatidylcholine，PC）复合体系乳化特性影响，采用荧光光谱表征复合体系构象变化，并分析乳层析指数、粒径、微观结构、表面疏水性和乳化活性及乳化稳定性解析射流空化对SPI-PC复合乳液结构变化及理化/功能性质的影响。结果表明：射流空化能显著改善复合乳液理化性质及乳化性等功能特性，与SPI相比，0.2 MPa、10 min处理组SPI-PC复合乳液的乳化活性指数和乳化稳定性指数分别增加了82.7%和9.43 倍。通过动态光散射和光学显微镜验证了射流空化处理SPI-PC较未射流空化处理样品的平均粒径减小，且表面疏水性提高，其中空化压力0.2 MPa、空化时间10 min时，复合乳液的平均粒径最低，表面疏水性最高；说明射流空化处理会使SPI疏水基团暴露，使SPI与PC之间的相互作用增加。荧光光谱分析说明空化作用力对SPI产生了猝灭作用。
关键词：射流空化；大豆分离蛋白-磷脂酰胆碱；荧光光谱；乳化性；乳化稳定性
大豆分离蛋白（soy protein isolates，SPI）因其营养价值及其功能特性如凝胶化、发泡性、水结合能力和乳化性而广泛应用于食品配方中，但天然SPI的功能特性不能满足实际需要，因此需对其改性。最近的研究表明，引入外部乳化剂如卵磷脂可以增强天然SPI的乳化性能[1]。磷脂酰胆碱（phosphatidylcholine，PC）是卵磷脂中的主要磷脂，是一种有效的天然乳化剂，广泛用于降低乳液的界面张力。Mottola等[2]发现，添加卵磷脂改善了使用天然或变性SPI制备的乳液的物理稳定性，SPI乳液的乳化率随着PC添加量的增大而增大。Li Chen等[3]研究得出，当PC与SPI相互作用时，他们之间发生疏水结合使蛋白质表面活性发生改变，乳液的乳化性增加。
近年来，在SPI的工业生产过程中，一些极端条件例如酸沉淀和高温，会导致蛋白质变性，降低其溶解性、乳化性和其他功能特性。为改善SPI物理结构性质并促进其与PC相互作用，已有部分研究学者利用包括物理、化学改性及酶法修饰对SPI进行改性处理[4]。Jambrak等[5]发现，40 kHz超声波处理可提高大豆浓缩蛋白的溶解度和乳液活性指数。此外，高压处理（包括高静水压和动态高压）也被用来改变SPI的乳化特性[6]。这些修饰的潜在机制主要归因于高压处理期间蛋白质分子的三级和四级构象变化。热处理是最重要和最常用的食品加工方法之一，也可用于改变蛋白质的功能特性，但这种改性的程度取决于蛋白质变性的程度[7]。在某些情况下，热诱导的变性通过增加SPI的表面疏水性使乳化性能得到改善[8]。常规物理化学处理方法可重复性低、成本较高且能耗高，产生的过高温度会影响大豆食品的营养成分；因此可利用射流空化处理得到高功能特性复合乳液。射流空化可以产生与超声相同的空化现象，流动液体在空压机中由孔板、叶轮或转子引起的压力差，从而产生空化气泡，空化气泡的破裂引发各种物理化学效应，包括产生剪切力、冲击波和压力，这类似于超声空化[9]。射流空化产生的空化强度略低于声学反应，但其空化率和能量效率高于声学设备（超声波）。Kumar等[10]利用碘化钾水溶液的分解/氧化模型反应比较射流空化和声空化的影响，结果表明射流空化会产生较超声空化更高效率的化学效应。
本实验利用射流空化调节SPI-PC复合乳液的构建，探究空化及剪切作用力对乳液乳化性等功能性质的影响。对比不同空化压力和空化时间对乳液的作用，对改性蛋白分子结构、溶解度以及复合乳液粒径、表面疏水性、乳化性和显微结构进行分析和表征，以期为射流空化技术产生高乳化性和乳化稳定性的SPI-PC复合产品提供理论依据。
1 材料与方法
1.1 材料与试剂
大豆品种为‘东农46号’，由东北农业大学大豆研究所赠予；PC、1-苯胺基-8-萘磺酸（8-anilino-1-naphthalenesulfonic acid，ANS） 美国Sigma公司；HCl、NaOH 北京新光化工试剂厂；NaH2PO4、Na2HPO4 天津市东丽区天大化学试剂厂；正己烷天津北科化学品有限责任公司；其他基础试剂（均为分析纯） 北京化学试剂公司。
1.2 仪器与设备
Ultra-Turrax T25型高速分散器 德国IKA公司；F-4500型荧光分光光度计、UV-2600型紫外-可见分光光度计 日本日立公司；ATN-300型全自动凯氏定氮仪 上海洪纪仪器设备有限公司；Bettersize2000型激光粒度分布仪丹东市百特仪器有限公司；BX53型显微镜 日本奥林巴斯公司；射流空化机 北京华瑞创世科技有限公司；AL204型分析天平 梅勒特-托利多仪器（上海）有限公司；pHSJ-4A型实验室pH计 上海仪电科学仪器股份有限公司；GL-20G-II高速冷冻离心机 上海安亭科学仪器厂。
1.3 方法
1.3.1 SPI制备
SPI制备参考Speroni等[11]的方法。新鲜大豆磨粉后与正己烷以1∶3（m/V）的比例混合，在40 ℃条件下搅拌2 h。将所得混合物在4 ℃、10 000hg条件下离心20 min，弃去上层油脂，再重复离心3 次，得到脱脂豆粉。将脱脂豆粉按1∶10（m/V）的料液比与蒸馏水混合，然后用2 mol/L NaOH溶液调节溶液的pH值至8.5，45 ℃条件下搅拌2 h后，将其悬浮液在4 ℃、10 000hg条件下离心20 min，取上清液再用2 mol/L盐酸溶液调节pH值至4.5。静置后在4 ℃、6 000hg条件下离心20 min，得蛋白质沉淀，水洗2 次，最后用2 mol/L NaOH溶液调节蛋白质pH值至7.0。将此蛋白溶液冷冻干燥后研磨即得粉末状SPI（蛋白质量分数为93.2%）。
1.3.2 射流空化处理制备SPI-PC复合乳液
实验分为SPI粗乳液组、未经射流空化处理的SPI-PC复合乳液组和经射流空处理的SPI-PC复合乳液组，各组乳液具体配制如下。
将SPI溶解于100 mL锥形瓶中，得到质量浓度为10 mg/mL的SPI乳液，加入葵花油使体系油相体积分数为20%后，置于高速分散器的探头下高速分散处理，20 000 r/min分散5 min后得到SPI粗乳液。
将PC与SPI以质量比1∶10的比例混合溶解于1 000 mL锥形瓶中，加入蒸馏水使SPI质量浓度为10 mg/mL，室温下不断搅拌2 h，得到SPI-PC混合液，再加入葵花油，使体系油相体积分数为20%，将溶液置于高速分散器的探头下高速分散处理，20 000 r/min分散5 min后得到SPI-PC复合乳液。
对SPI-PC复合乳液，采用射流空化处理，压力为0.2、0.4 MPa和0.6 MPa，处理时间为5、10 min。实验过程中，将射流空化装置置于2 ℃的冰水浴中，每5 min向冰水浴中加入冰块保持低温，以免温度对SPI-PC复合乳液产生影响。
1.3.3 荧光光谱测定
采用F-4500型荧光分光光度计测定样品的荧光光谱[12]。用20 mmol/L Tris-HCl缓冲液（pH 7.0）制备0.2 mg/mL经射流空化处理的样品，设置激发波长为300～400 nm区域，激发狭缝为10 nm，发射狭缝为10 nm，重复扫描3 次。
1.3.4 表面疏水性测定
表面疏水性的测定参考Hu Hao等[13]的方法稍加修改，将不同射流空化处理的乳液在20 000hg、4 ℃下离心15 min获取上层清液，并用0.01 mol/L磷酸盐缓冲液稀释复合乳液，得到蛋白梯度质量浓度为0.000 5～0.100 0 mg/mL的上清液。将所得梯度的上清液溶液与6.0 mmol/L ANS以体积比100∶1混合，用分光荧光计在365 nm（激发）和484 nm（发射）的波长处测量相对荧光强度。以相对荧光强度对蛋白质量浓度作图，曲线的初始斜率即样品的表面疏水性。
1.3.5 乳化活性指数和乳化稳定性指数的测定
乳液的乳化活性指数（emulsifying activity index，EAI）和乳化稳定性指数（emulsion stability index，ESI）的测定参考文献[14]。将SPI-PC复合乳液用0.001 g/mL十二烷基硫酸钠（sodium dodecyl sulfate，SDS）溶液稀释200 倍，混合均匀后在500 nm波长处测定吸光度（A0），静置10 min后测定吸光度（A10），以0.1% SDS溶液做空白对照，EAI和ESI分别按公式（1）、（2）计算。

式中：ρ表示乳化液质量浓度/（g/mL）；N表示稀释倍数（200）；φ表示乳液中油相体积分数（25%）；A0、A10为乳液分别在0、10 min时的吸光度；t10-t0表示时间差（10 min）。
1.3.6 乳层析指数的测定
乳液乳析稳定性的测定参考Moschakis等[15]的方法。将制备好的乳液分别置于20 mL的具塞比色管中，25 ℃条件下静置7 d，每天观察SPI-PC乳液的相分离现象并记录乳液高度。按公式（3）计算乳层析指数。

式中：HC、HE分别为底部清液层高度/cm、乳液总高度/cm。
1.3.7 乳液粒径测定
参考Yang Ying等[16]的方法，使用激光粒度分布仪测定乳液的平均液滴直径。为了防止多次散射的影响，在测量之前使用磷酸盐缓冲溶液在室温下将每个样品稀释1 000 倍。乳液颗粒的折射率为1.46，分散介质的折射率为1.33，检测温度保持在25 ℃。所有测量做3 次平行，结果以D[4,3]/μm表示粒径的累积平均直径。
1.3.8 光学显微镜观察
乳液的光学显微镜观察参考文献[17]。将经过射流空化处理的新鲜乳液置于显微镜载物台上，固定载玻片，用40 倍光学显微镜观察，通过BX53型照相机获取照片，照片在连接到电脑的数字图像处理软件获得。
1.3.9 ζ-电位的测定
参照齐军茹等[18]的方法，采用激光粒度分布仪测定样品的ζ-电位。将制备的不同乳液分散到pH 7.0的磷酸盐缓冲液中，使其质量分数为0.005%，上样体积为1 mL，测定温度为25 ℃，温度平衡2 min，每个样品平行测定3 次。
1.4 数据统计及分析
每组数据至少重复3 次，利用Origin 9.1软件作图。利用SPSS 20.0软件进行ANOVA差异显著性分析及相关性分析，P＜0.05表示差异显著。
2 结果与分析
2.1 射流空化处理后SPI-PC复合乳液荧光光谱分析结果
蛋白质的内源荧光光谱由荧光氨基酸的化学环境决定，即色氨酸（Trp）、酪氨酸（Tyr）以及苯丙氨酸（Phe），这三者的荧光强度比通常为100∶9∶0.5，由此认为SPI的荧光主要来自于Trp残基。研究发现如果最大吸收波长（λmax）小于330 nm，表示蛋白质中Trp残基被掩埋，Trp处于“非极性”环境中；λmax大于330 nm则表明Trp残基位于蛋白质分子外部的“极性”环境中[19]。图1为各组乳液的荧光光谱图。亲水性较强的PC与SPI结合，使Trp残基的微环境发生改变，从而使SPI的荧光强度发生改变，与未加入PC的样品相比，加入PC的乳液中SPI的内源荧光强度降低，λmax发生红移，说明PC与SPI发生相互作用，并改变了SPI的结构，进而使Trp残基微环境发生改变。与未处理的SPI-PC样品相比，经过射流空化作用的SPI-PC复合乳液的最大荧光强度均降低，说明空化作用力对SPI产生了猝灭作用。荧光猝灭可以用来解释射流空化对乳液稳定性的影响[20]。与未空化处理样品相比，空化样品的λmax均发生轻微红移，并伴随着荧光强度的减小，这说明在射流空化处理过程中，产生的大量气泡使蛋白质解折叠，蛋白质疏水基团暴露，从而增强了蛋白质与PC的结合[19]。

图 1 射流空化作用下SPI-PC的荧光光谱图
Fig. 1 Fluorescence spectra of SPI-PC with jet cavitation
2.2 射流空化处理对SPI-PC复合乳液表面疏水性的影响

图 2 射流空化处理对SPI-PC复合乳液表面疏水性的影响
Fig. 2 Effect of jet cavitation treatment on surface hydrophobicity of SPI-PC
乳液的乳化性能与蛋白质的表面疏水性呈正相关，表面疏水性作为蛋白的结构特性，对蛋白的功能性质具有很大的影响[21]。如图2所示，与SPI乳液相比，SPI-PC复合乳液表面疏水性增加，是因为PC具有修饰SPI表面结构的作用。除0.6 MPa、10 min处理组外，经射流空化的SPI-PC复合乳液均比未射流空化处理的SPI-PC乳液表面疏水性高，说明未射流空化处理的SPI-PC复合乳液中，SPI的大多数疏水基团被紧密包埋在蛋白质的紧密结构中，SPI的疏水基团和探针之间的接触受到抑制，射流空化处理产生的压力使蛋白质中的弱氢键和分子间相互作用力减弱，进而改变了SPI的结构及其表面疏水性[22]。射流空化处理时间5 min时，随着处理压力的增加，乳液的表面疏水性先增加后降低；样品经射流空化0.2 MPa、10 min处理后表现出最高的表面疏水性，这可能是射流空化产生的作用力使SPI与PC结合更紧密，蛋白质以疏水作用固定在PC上，复合体系的疏水性进一步提高。射流空化处理时间10 min时，随着处理压力增加，复合乳液的表面疏水性下降，可能是因为过长的处理时间使SPI产生一定聚集，蛋白质的疏水基团被包埋在结构中，疏水性探针未能接触到复合乳液疏水基团中的疏水性氨基酸，SPI与PC之间的结合程度下降[23]。
2.3 射流空化处理对SPI-PC复合乳液EAI和ESI的影响

图 3 射流空化处理对SPI-PC复合乳液乳化特性的影响
Fig. 3 Effect of jet cavitation treatment on emulsifying characteristics of SPI-PC
乳化特性是衡量SPI在油-水界面上吸附能力的指标，包括EAI和ESI[24]。SPI的乳化能力是影响复合乳液乳化能力的重要因素之一，如图3所示，经射流空化处理后SPI-PC复合乳液的EAI和ESI都显著增加（P＜0.05），这主要是因为空化处理使SPI分子结构发生解折叠，其疏水基团暴露，蛋白质表面疏水性增加，ESI和EAI更高[25]。经过0.2 MPa微射流空化处理10 min的SPI-PC复合乳液呈现出最高的EAI和ESI，与SPI相比，0.2 MPa、10 min处理组SPI-PC复合乳液的EAI和ESI分别增加了82.7%和9.43 倍。然而，在处理时间为5 min时，随着空化压力增加，复合乳液体系的EAI和ESI先增加后下降；空化时间为10 min时，复合乳液体系的EAI和ESI随着空化压力的增加显著下降（P＜0.05）。Yildiz等[26]发现在中性pH值下进行高压处理可以提高SPI的EAI，但对ESI无显著影响。因此，射流空化能促进蛋白质的修饰，从而改变复合乳液的物理化学性质（溶解度、表面疏水性）以及乳化性质（EAI和ESI）。
2.4 射流空化处理对SPI-PC复合乳液乳层析指数的影响

图 4 射流空化处理对SPI-PC复合乳液乳层析指数的影响
Fig. 4 Effect of jet cavitation treatment on creaming index of SPI-PC composite emulsion
乳层析指数能表征乳液抵抗重力分层的程度[27]。如图4所示，乳液的乳层析指数随着贮藏时间延长逐渐增加，放置5 d后乳液的乳层析指数基本保持不变。大部分样品在室温条件下放置24 h即会产生相分离现象（0.2 MPa、10 min处理组除外），可能是由于乳液表面的组成物电荷含量较低，未能为液滴间提供足够的排斥力，阻止乳层析的发生，这与Mantovani等[28]的研究结果一致。与未射流空化的SPI-PC乳液相比，经过射流空化的样品的乳层析指数均减小，这是因为射流空化产生的剪切作用力使蛋白柔性结构舒张，SPI与PC形成的复合体系构象发生改变，SPI与PC紧密结合形成稳定的界面膜，包覆油滴使其聚集程度减小，因此乳层析指数较低。静置5 d后，空化时间为5 min的SPI-PC乳液，乳层析指数随着空化压力增加先降低后升高，因为在一定条件下压力增大时，射流空化产生的剪切力会破坏蛋白质结构，使疏水基团重新包埋进蛋白质中，乳液乳化性降低，乳液不稳定。空化时间为10 min时，乳层析指数随着空化压力增加而增加，这是因为射流空化时间过长会破坏蛋白质的结构，使其乳化能力减弱，乳层析指数增加。
2.5 射流空化制备的SPI-PC乳液的显微结构和粒径
粒径分布可以衡量射流空化处理SPI-PC乳液的稳定性，也是乳液理化和功能特性的主要参数，为了进一步表征不同样品的乳液稳定性，将粒径分布图叠加在显微图像上，以更好地描述乳液微观结构。由图5A、B1、B2、C3可知，未经处理的SPI-PC复合乳液和0.2 MPa 5 min、0.4 MPa 5min、0.6 MPa 10 min处理组SPI-PC复合乳液中有一些大液滴并且广泛絮凝，样品粒径呈现双峰分布状态；由图5B3、C1和C2可知，0.6 MPa 5 min、0.2 MPa 10 min、0.4 MPa 10 min处理组SPI-PC复合乳液粒径呈现单峰分布，液滴小且分布均匀。这种现象主要是因为未处理的SPI-PC样品稳定性差，空化时间为5 min时，随着空化压力增加，液滴逐渐减小，乳液粒径由双峰分布变为单峰分布，这是因为空化产生的涡流作用将絮凝物剪切成小聚集体。空化时间为10 min时，随着空化压力持续增大，液滴由单峰分布变为双峰分布，液滴变大，说明乳液聚集。当空化压力相同时，压力较低（0.2、0.4 MPa）的样品随着空化时间的延长，液滴变小，而当空化压力为0.6 MPa时，随着空化时间延长，液滴出现聚的现象。Sui Xiaonan等[29]指出，长时间超声处理会导致液滴增大，这与本实验结果一致。这主要是由于高压使蛋白质结构发生改变，蛋白质的疏水基团减少，使得SPI失去表面活性，蛋白质形成的乳液形成易于聚结的界面膜，复合乳液稳定性降低，SPI分子重新聚集。

图 5 射流空化处理SPI-PC复合乳液显微镜图及粒径分布图
Fig. 5 Effect of jet cavitation treatment on microstructure and particle size distribution of SPI-PC composite emulsion

图 6 射流空化处理SPI-PC复合乳液的平均粒径
Fig. 6 Average particle size of jet cavitation-treated SPI-PC composite emulsion
如图6所示，未经处理的SPI-PC复合乳液样品的平均粒径为（15.4f0.4）μm，射流空化处理会显著降低SPI-PC复合乳液的平均粒径，其中空化压力0.2 MPa、空化时间10 min时，复合乳液的平均粒径最低，比未处理的SPI-PC复合乳液降低了79.60%。0.2、0.4、0.6 MPa下处理10 min，复合乳液平均粒径分别降至3.30、3.97、5.78 μm。因为复合乳液的聚集体经射流空化处理后，其在局部温度、压力、剪切力或冲击波的作用下发生解离，较高的压力可能导致气体以更高的注入速率进入射流空化室，导致涡旋中心的压力下降更大，形成更多的空化气泡，空化强度的影响更强，平均粒径减小[20]。Morales[25]和Wu Yu[30]等研究的超声及超高压均质对乳液粒径影响的结论与本研究结果一致。
2.6 射流空化处理对SPI-PC复合乳液ζ-电位的影响

图 7 射流空化处理SPI-PC复合乳液的ζ-电位
Fig. 7 ζ-Potential of SPI-PC composite emulsion treated with jet cavitation
ζ-电位可用来表征乳滴之间的静电相互作用，乳液表面净电荷越多，乳滴之间静电斥力越大，乳液越稳定[31]。如图7所示，在中性条件下，各组SPI-PC复合乳液均呈负电性，未经射流空化处理的复合乳液的ζ-电位的绝对值为2.7 mV。射流空化处理使乳液ζ-电位的绝对值增加，空化压力0.4 MPa、空化时间5 min时，SPI-PC复合乳液表面电荷密度最大，ζ-电位绝对值为13.1 mV。可能是由于射流空化处理破坏了蛋白质结构，蛋白质解折叠，带电基团暴露，乳液电位绝对值增加。处理时间为5 min时，随着空化压力的增加，SPI-PC复合乳液ζ-电位的绝对值先升高后降低，处理时间为10 min时，ζ-电位的绝对值降低。可能是因为空化压力使乳液中带电基团暴露，然而随着压力持续增加，空化作用力诱导蛋白质聚集，带电基团被重新包埋在蛋白质内部结构中[32]。
3 结 论
通过制备不同射流空化条件处理的SPI-PC复合乳液，发现射流空化产生的高速剪切作用力会使SPI疏水基团暴露，SPI与PC之间的相互作用增强，与未处理的复合乳液相比，SPI-PC复合乳液的EAI和ESI增加，乳液粒径减小且分布均匀。对比不同射流空化条件制备的复合乳液的荧光光谱、表面疏水性、粒径分布和乳化性分析发现，射流空化破坏了蛋白的分子结构，蛋白分子展开，使更多的PC与蛋白结合，蛋白质中的荧光基团暴露于水溶液中而产生荧光猝灭，荧光强度降低，蛋白与PC复合乳液ESI高，然而空化压力较高和时间过长影响了蛋白的结构和活性基团的暴露，进而影响复合物的乳化特性，形成的乳液粒径较大，导致乳液不稳定，EAI和ESI下降。
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Effect of Jet Cavitation on Soy Protein Isolate-Phosphatidylcholine Emulsion Properties
TIAN Tian1, JIANG Zhongyang1, WANG Zhongjiang1, LI Yang1,2, LI Liang1,*
(1. School of Food Science, Northeast Agricultural University, Harbin 150030, China;2. Harbin Food Industry Research Institute, Harbin 150028, China)
Abstract: This study was undertaken in order to investigate the effect of jet cavitation on physicochemical and functional properties of a soy protein isolate (SPI)-phosphatidylcholine (PC) stabilized emulsion. The conformational changes of the composite system were characterized by fluorescence spectroscopy, and the creaming index, particle size, microstructure,surface hydrophobicity and emulsifying activity and emulsion stability were analyzed. The results showed that jet cavitation significantly improved physicochemical and emulsifying properties of the composite emulsion. The emulsifying activity index(EAI) and emulsion stability index (ESI) of the composite emulsion treated at 0.2 MPa for 10 min were 82.7% and 10.43-fold higher than those of the single SPI stabilized emulsion, respectively. The average particle size of the composite emulsion system became smaller and surface hydrophobicity became higher after jet cavitation as examined by dynamic light scattering and optical microscopy. The lowest average particle size and the highest surface hydrophobicity were obtained with the 0.2 MPa/10 min treatment. Thus, we concluded that jet cavitation could cause the exposure of hydrophobic groups in the interior of the protein, increasing the interaction between the protein and PC. Fluorescence spectroscopy indicated that cavitation force had a quenching effect on the fluorescence intensity of SPI.
Keywords: jet cavitation; soy protein isolate-phosphatidylcholine; fluorescence spectrum; emulsifying activity; emulsion stability DOI:10.7506/spkx1002-6630-20190106-079
引文格式：2019-01-06
基金项目：黑龙江省应用技术研究与开发计划重大项目（GA17B002）；
“十三五”国家重点研发计划重点专项（2016YFD0401402）；
黑龙江省博士后资助项目（LBH-Z18030）；黑龙江省自然科学基金项目（C2018024）
第一作者简介：田甜（1995—）（ORCID: 0000-0002-6852-7656），女，硕士研究生，研究方向为粮食、油脂及植物蛋白工程。E-mail: Ttian0317@163.com
*通信作者简介：李良（1981—）（ORCID: 0000-0003-1259-5876），男，教授，博士，研究方向为粮食、油脂及植物蛋白工程。E-mail: liliangneau@163.com
中图分类号：TS214.2
文献标志码：A
文章编号：1002-6630（2020）03-0099-07
引文格式：田甜, 江中洋, 王中江, 等. 射流空化对大豆分离蛋白-磷脂酰胆碱乳化特性的影响[J]. 食品科学, 2020, 41(3): 99-105.DOI:10.7506/spkx1002-6630-20190106-079. http://www.spkx.net.cn
TIAN Tian, JIANG Zhongyang, WANG Zhongjiang, et al. Effect of jet cavitation on soy protein isolate-phosphatidylcholine emulsion properties[J]. Food Science, 2020, 41(3): 99-105. (in Chinese with English abstract) DOI:10.7506/spkx1002-6630-20190106-079. http://www.spkx.net.cn