蔷薇红景天低聚原花青素对动脉粥样硬化大鼠肝脏的保护...

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蔷薇红景天低聚原花青素对动脉粥样硬化大鼠肝脏的保护作用蔷薇红景天低聚原花青素对动脉粥样硬化大鼠肝脏的保护作用

韩 雪，周 茜，牛佳卉，吴梦颖，王亚旭，袁 静，赵 文*

（河北农业大学食品科技学院，河北 保定 071001）

摘 要： 目的：研究蔷薇红景天低聚原花青素（oligomeric procyanidins from Rhodiola rosea L.，OPCRR）对动脉粥样硬化（atherosclerosis，AS）大鼠肝脏的保护作用。方法：采用VD3结合高脂乳剂灌胃的方法建立大鼠AS模型。随机分为阴性对照组，模型对照组，OPCRR 60、120、240 mg/kg mb剂量组和姜黄素（50 mg/kg mb）对照组。连续灌胃8 周后，通过分析各组大鼠肝脏的组织形态、脂质、氧化应激和炎症细胞因子等指标水平的变化，研究OPCRR对大鼠AS的干预效果。结果：与模型对照组相比，OPCRR可以显著降低大鼠血清中总胆固醇（total cholesterol，TC）、甘油三酯（triglyceride，TG）、低密度脂蛋白胆固醇（low density lipoprotein cholesterol，LDL-c）水平（P＜0.05），显著提高高密度脂蛋白胆固醇（high density lipoprotein cholesterol，HDL-c）水平（P＜0.05），并显著降低大鼠AS指数（P＜0.05）；OPCRR可显著减少肝脏中的炎性灶和细胞变性，减轻肝细胞的受损程度；肝组织TC、TG、LDL-c和极低密度脂蛋白胆固醇（very low density lipoprotein cholesterol，VLDL-c）水平显著下降（P＜0.05），HDL-c水平显著升高（P＜0.05）；肝脏中丙二醛的含量显著减少，超氧化物歧化酶和谷胱甘肽过氧化酶的活力显著提高（P＜0.05）；同时肝脏中的白细胞介素（interleukin，IL）-1β、IL-6、IL-10、肿瘤坏死因子-α、单核细胞趋化蛋白-1和细胞间黏附因子-1水平显著下降（P＜0.05）。结论：OPCRR可以通过改善肝脏中脂质代谢、氧化应激和炎症反应而起到对AS大鼠肝脏的保护作用，且整体效果优于姜黄素。

关键词：低聚原花青素；蔷薇红景天；动脉粥样硬化；肝脏

动脉粥样硬化（atherosclerosis，AS）是一种非常复杂的慢性疾病[1]，表现为脂质的积累、动脉血管壁的增厚以及某些炎性细胞因子的增多[2]，也是心血管疾病发病率和死亡率增加的重要因素[3]。造成AS的发病原因非常复杂，其中血脂异常导致过多的脂质在血管内壁沉积[4]、体内氧化应激造成的损伤和诱发的一些炎症反应为主要因素[5]。肝脏是脂质代谢的重要器官，长期摄入高脂饮食会对肝脏造成一定的负担，进而导致肝脏脂质代谢紊乱、肝脏脂肪沉积和病变[6]。近年来，随着我国国民生活水平的提高及饮食习惯的改变，AS的患病率越来越高，并成为中国人群的主要死亡原因[7]。AS主要是胆固醇、胆固醇酯在动脉血管内、中膜大量沉积所形成的病理改变，其危险因素包括血脂异常、血糖异常、肥胖等[8]。肝脏是脂肪消化、吸收、分解、合成及运输等过程的重要场所[9]。研究结果显示，肝细胞脂肪病变及其伴随的肝脏坏死性炎症均对AS有促进作用[10]。因此研究AS发病过程中肝脏的生理状态对于预防和治疗AS具有指导意义。

原花青素是一类广泛存在于植物中的天然多酚类化合物，是以黄烷-3-醇及其衍生物为结构单元，通过C—C键聚合而形成的聚合物。原花青素对心血管系统具有保护作用，尤其是在脂质代谢中通过调整氧化低密度脂蛋白而起到抗氧化作用[11]。根据聚合度可将原花青素分为高聚原花青素和低聚原花青素，其中低聚原花青素更容易被吸收。研究表明，低聚原花青素具有抗氧化、抗炎症、缓解机体氧化应激和脂质过氧化反应，对退行性疾病具有预防作用[12]。

蔷薇红景天（Rhodiola rosea L.）为景天科（Crassulaceae）、红景天属（Rosales），主要生长在我国高海拔地区。研究表明，蔷薇红景天作为一种珍贵的药用资源，主要生物活性物质有红景天苷、酪醇和原花青素等。具有抑菌、抗病毒、抗炎、抗肿瘤、抗缺氧、保护神经细胞和增强记忆力的功效，对神经系统和心脏具有保护作用。然而，目前国内外对红景天的研究主要集中在其化学成分的分析，特别是红景天苷及其制备方法和抗炎抗氧化等活性的研究，而对红景天中原花青素的研究相对较少，更少有对红景天原花青素干预AS的研究。

课题组前期对蔷薇红景天低聚原花青素（oligomeric procyanidins from Rhodiola rosea L.，OPCRR）进行了提取、纯化，并对OPCRR的稳定性[13]、抗氧化和抗衰老等活性[14]进行了研究，结果显示OPCRR具有较强的清除1,1-二苯基-2-三硝基苯肼自由基、羟自由基和超氧阴离子自由基的能力，从而能够增强抗衰老活性。姜黄素是从姜科姜黄属植物姜黄根茎中提取的一种天然酸性酚类物质。研究表明，姜黄素具有降低高脂血症、抗内皮功能失调、抗氧化等作用，可在多个环节上影响AS的发生和发展[15]，因此本实验中将其设置为阳性对照组。

本实验采用VD3辅助脂肪乳剂灌胃的方法建立大鼠AS模型，通过对大鼠肝脏病理切片的观察以及肝脏中脂质代谢、氧化应激和相关炎症细胞因子等指标的测定，初步确定OPCRR对AS模型大鼠肝脏的保护作用并探讨其作用机制。

1 材料与方法1.1 动物、材料与试剂

雄性Wistar大鼠66 只，8 周龄，体质量160～180 g，由北京维通利华实验动物技术有限公司提供，许可证号：SCXK（京）2014-0004。

OPCRR为河北农业大学食品营养安全研究室制备，参考实验室制备专利[16]的方法进行提取、纯化。

现在，Réhahn在越南安家了，他正在拍摄一个名为《宝贵遗产》的重要项目。他的目标是拍下越南境内所有54个民族的照片，记录少数民族的服饰并了解他们的风俗传统。到目前为止，他已经拍了49个民族的照片，接下来还会有更多作品。他在越南会安经营着一个与“宝贵遗产”同名的文化博物馆，其中展示了他拍摄的照片，以及民族服饰和手工制品。

VD3、丙基硫氧嘧啶、去氧胆酸钠、胆固醇 北京索莱宝科技有限公司；总胆固醇（total cholesterol，TC）测试盒、甘油三酯（triglyceride，TG）测试盒、低密度脂蛋白胆固醇（low density lipoprotein cholesterol，LDL-c）测试盒、高密度脂蛋白胆固醇（high density lipoprotein cholesterol，HDL-c）测试盒、极低密度脂蛋白胆固醇（very low density lipoprotein cholesterol，VLDL-c）测试盒、丙二醛（malondialdehyde，MDA）测试盒、超氧化物歧化酶（superoxide dismutase，SOD）测定试剂盒、谷胱甘肽过氧化酶（glutathione peroxidase，GSH-Px）测定试剂盒、蛋白定量（考马斯亮蓝法）试剂盒 南京建成生物工程研究所；白细胞介素（interleukin，IL）-1β酶联免疫吸附测定（enzyme-linked immunosorbent assay，ELISA）试剂盒、IL-6 ELISA试剂盒、IL-10 ELISA试剂盒、单核细胞趋化蛋白-1（monocyte chemoattractant protein-1，MCP-1）ELISA试剂盒、细胞间黏附因子-1（intercellular cell adhesion molecule-1，ICAM-1）ELISA试剂盒、肿瘤坏死因子-α（tumor necrosis factor-α，TNF-α）ELISA试剂盒 武汉博士德生物工程有限公司；其他试剂均为国产分析纯。

1.2 仪器与设备

1500-823酶标仪、Finesse石蜡切片机 美国Thermo Scientific公司；SCIENTZ-IID细胞破碎仪、SCIENTZ-48组织研磨器 宁波新芝生物科技股份有限公司；FA2204B电子天平 上海精密科学仪器有限公司；DH-250电热恒温培养箱 上海胜启仪器仪表有限公司。

1.3 方法

1.3.1 大鼠AS模型的建立与剂量设计

大鼠饲养1 周后开始正式实验。随机分为6 组，即阴性对照组、模型对照组及OPCRR低（60 mg/kg mb）、中（120 mg/kg mb）、高（240 mg/kg mb）剂量组和姜黄素（50 mg/kg mb）对照组（阳性对照组），每组11 只。模型对照组、OPCRR3 个剂量组和姜黄素对照组用VD3辅助高脂乳剂灌胃法造模，即实验开始前连续3 d灌胃VD3 40万 IU/（kg·d），之后每天灌胃高脂乳剂，阴性对照组以蒸馏水代替，连续8 周。在造模的同时，相应组动物每天灌胃3 个剂量的OPCRR和姜黄素，阴性对照组和模型对照组灌胃蒸馏水。

1.3.2 大鼠血清制备及血脂指标测定

第56天，各组大鼠禁食12 h后，称质量、麻醉、股动脉取血，3 000 r/min离心，取血清，检测大鼠血清中TC、TG、LDL-c和HDL-c水平，并按照如下公式计算AS指数（atherosclerosis index，AI）。

   

式中：cTC为测定的血清中TC的浓度/（mmol/mL）；cHDL-c为测定的血清中HDL-C的浓度/（mmol/mL）。

1.3.3 大鼠动脉及肝脏组织生化指标测定

实施东北振兴战略以来，大连尽管取得了重要的阶段性成果，在东北的辐射带动作用不断提升，但与上海、深圳等先进地区相比，大连的引领辐射带动作用还有相当大的差距，与新时代新要求发展还不完全适应，制约大连率先全面振兴和长远发展的一些深层次问题尚未得到根本解决，短板仍然存在，主要表现在以下五个方面。

取大鼠肝脏，称质量。部分肝脏按照1∶9（m/V）加入生理盐水，利用细胞破碎仪制成质量分数10%的肝脏匀浆，酶标仪检测大鼠肝组织中脂质、氧化应激和相关炎症因子等指标水平。取大鼠动脉，将动脉与剩余肝脏组织样品在体积分数10%福尔马林溶液中充分固定后，石蜡包埋，切片，苏木精-伊红（hematoxylin-eosin，HE）染色。

1.4 数据统计分析

实验数据运用SPSS 13.0进行统计分析。首先进行正态性检验，若数据符合正态分布，采用单因素方差分析（One-way ANOVA）进行显著性分析，P＜0.05表示差异显著。本实验中所有数据均以±s表示。

2 结果与分析2.1 建立大鼠AS模型

表1 大鼠AS造模后血脂指标的变化（n＝11）
Table1 Changes in blood lipid levels in rats after atherosclerosis induction （n= 11）

     

注：*.与阴性对照组相比差异显著（P＜0.05）；**.与阴性对照组相比差异极显著（P＜0.01）。下同。

组别 TC浓度/（mmol/mL）TG浓度/（mmol/mL）LDL-c浓度/（mmol/mL）HDL-c浓度/（mmol/mL）AI阴性对照组 1.53±0.08 0.35±0.09 2.64±0.42 0.63±0.09 1.71±0.40模型对照组 2.95±0.31** 0.85±0.06** 5.40±1.75** 0.21±0.08**15.73±3.71**

由表1可知，与阴性对照组相比，模型对照组的大鼠TC、TG、LDL-c水平极显著升高（P＜0.01），HDL-c水平极显著降低（P＜0.01），AI极显著升高（P＜0.01）且大于4，说明造模成功。

     

图1 大鼠AS造模后动脉组织病理学变化
Fig.1 Histopathological change in artery of AS rats

由图1中HE染色切片可知，阴性对照组大鼠动脉壁的各层结构均正常，细胞排列整齐，层次清晰且内膜光滑，中膜平滑肌层无萎缩；模型对照组各层结构排列紊乱，与阴性对照组相比有较多的脂质沉积，内膜细胞排列疏松，内膜增厚，说明AS造模成功。

2.2 OPCRR对AS大鼠肝脏组织形态学的影响   
     

图2 AS大鼠肝脏组织病理学变化
Fig.2 Histopathological changes in liver of AS rats

如图2所示，阴性对照组大鼠肝脏组织形态结构清晰且完整，肝小叶和肝窦正常，肝细胞排列整齐，以中央静脉为轴心呈辐射状排列，肝细胞形态正常，细胞核类似圆形，位于细胞中央（图2A1、A2）；模型对照组大鼠肝细胞出现肿胀，细胞核被挤到边缘，肝小叶结构紊乱，肝索排列紊乱，肝窦缩小甚至消失（图2B1、B2）；OPCRR低剂量组大鼠的肝脏组织情况与模型对照组情况基本相似（图2C1、C2）。OPCRR中、高剂量组和姜黄素对照组大鼠的肝组织情况均有所好转，肝细胞排列较为清晰，肝小叶结构较为正常，汇管区有少量炎细胞浸润（图2D～F）。

2.3 OPCRR对AS大鼠肝脏脂质的影响

由表2可知，与阴性对照组相比，模型对照组大鼠肝脏中TC、TG、LDL-c和VLDL-c的含量均极显著上升（P＜0.01），HDL-c的含量极显著降低（P＜0.01），即AS造模成功。与模型对照组相比，OPCRR组和姜黄素对照组各项血脂指标显著改善，OPCRR组和姜黄素对照组的TC、LDL-c和VLDL-c的含量极显著降低（P＜0.01），TG的含量显著降低（P＜0.05），HDL-c的含量显著升高（P＜0.05），说明OPCRR对AS大鼠肝脏的脂质代谢调节具有显著改善作用，且与姜黄素效果相似。

本研究通过试验确定了玉米秸秆淀粉-聚乙烯醇薄膜的最佳配方，并测试了抗拉强度和变形率，研究了选材的添加量对薄膜的影响。该配方适用于制作食品包装薄膜，有助于使玉米秸秆得到充分利用，减少对食品的污染，并且安全环保，可以降低制作成本，减少废弃物，保护环境。

表2 OPCRR对AS大鼠肝脏中脂质指标的影响（n＝11）
Table2 Effect of OPCRR on lipid parameters in liver of AS rats （n = 11）mmol/mg

     

注：#.与模型对照组相比差异显著（P＜0.05）；##.与模型对照组相比差异极显著（P＜0.01）。下同。

组别 TC含量 TG含量 LDL-c含量 HDL-c含量 VLDL-c含量阴性对照组 0.10±0.01 0.09±0.01 0.012±0.009 0.041±0.015 0.73±0.14模型对照组 0.25±0.05** 0.15±0.04**0.045±0.009**0.017±0.009**1.90±0.47**OPCRR低剂量组 0.17±0.01## 0.16±0.03# 0.014±0.004##0.038±0.017# 1.38±0.44##OPCRR中剂量组 0.14±0.02## 0.13±0.04# 0.012±0.003##0.043±0.017# 1.04±0.17##OPCRR高剂量组 0.11±0.03## 0.11±0.03# 0.011±0.005##0.039±0.017# 1.11±0.31##姜黄素对照组 0.15±0.01## 0.10±0.04# 0.014±0.008##0.038±0.021# 0.97±0.16##

2.4 OPCRR对AS大鼠肝脏氧化应激指标水平的影响

表3 OPCRR对AS大鼠肝脏氧化应激指标水平的影响（n＝11）
Table3 Effect of OPCRR on antioxidant parameters levels in liver of AS rats （n= 11）

     

GSH-Px活力/（U/mg）阴性对照组 163.2±20.0 4.99±0.40 1 032.6±109.5模型对照组 82.4±8.0** 6.75±1.44* 766.1±117.4**OPCRR低剂量组 98.3±12.1# 5.29±0.61# 845.4±76.9#OPCRR中剂量组 101.1±13.6# 5.20±0.55# 1 069.4±27.0##OPCRR高剂量组 109.4±6.8## 5.12±0.99# 968.0±82.6##姜黄素对照组 100.1±13.2# 5.73±1.01 918.3±36.4##组别 SOD活力/（U/mg）MDA含量/（nmol/mg）

由表3可知，与阴性对照组相比，模型对照组大鼠肝脏中的SOD和GSH-Px活力极显著降低（P＜0.01），MDA的含量显著升高（P＜0.05）。与模型对照组相比，OPCRR剂量组与姜黄素对照组均有改善的趋势，其中OPCRR各剂量组显著提高了肝脏中SOD活力（P＜0.05，P＜0.01），姜黄素对照组显著提高SOD活力（P＜0.05）；在提高肝脏中GSH-Px的活力方面，低剂量的OPCRR可以显著提高GSH-Px的活力（P＜0.05），中、高剂量的OPCRR和姜黄素可以极显著提高GSH-Px的活力，说明OPCRR提高GSH-Px的效果基本与姜黄素相似；OPCRR显著降低了大鼠肝脏中MDA的含量（P＜0.05），而姜黄素对照组相对于模型对照组存在降低的趋势，但基本上无显著性差异，即OPCRR降低肝脏中MDA含量的效果要优于姜黄素。

2.5 OPCRR对AS大鼠肝脏相关炎症细胞因子水平的影响

由表4可知，与阴性对照组相比，模型对照组所有炎性细胞因子的水平均极显著提高（P＜0.01）。与模型对照组相比，OPCRR组和姜黄素对照组均有降低各炎症细胞因子水平的趋势，其中低剂量OPCRR可显著降低肝脏中IL-1β的水平（P＜0.05），中、高剂量的OPCRR可极显著降低肝脏中IL-1β的水平（P＜0.01），而姜黄素则对其没有明显影响；OPCRR各剂量和姜黄素均可极显著降低IL-6的水平（P＜0.01）；低、中剂量的OPCRR和姜黄素均可以显著降低IL-10的水平（P＜0.05），高剂量的OPCRR可极显著降低IL-10的水平（P＜0.01）；低剂量的OPCRR对MCP-1和ICAM-1水平无显著性影响，中、高剂量的OPCRR可显著降低MCP-1和ICAM-1的水平（P＜0.05，P＜0.01）；低剂量OPCRR和姜黄素均可以显著降低肝脏中TNF-α质量浓度（P＜0.05），中、高剂量OPCRR可以极显著降低肝脏中TNF-α质量浓度（P＜0.01），说明在降低炎症因子水平方面，OPCRR整体水平要优于姜黄素。

表1 OPCRR对AS大鼠肝脏中炎症细胞因子水平的影响（n＝11）
Table1 Effect of OPCRR on in fl ammatory cytokine levels in liver of AS rats （n= 11）pg/mL

     

组别 IL-1β质量浓度 IL-6质量浓度 IL-10质量浓度 TNF-α质量浓度 ICAM-1质量浓度 MCP-1质量浓度阴性对照组 362.94±56.76 1 238.58±81.22 991.31±106.93 177.65±11.89 1 113.20±143.98 1 443.43±225.39模型对照组 478.55±73.83** 1 780.57±123.71**1 227.60±100.72** 289.87±21.25** 1 442.53±137.06**1 948.86±266.69**阳性对照组 432.81±31.81 1 287.52±96.28## 1 071.66±139.21# 211.45±22.91# 1 277.81±119.86 1 753.59±136.32#OPCRR低剂量组 409.90±55.20# 1 299.78±75.09## 1 094.90±124.79# 238.44±23.07# 1 307.70±123.05 1 934.66±340.47 OPCRR中剂量组 380.44±46.87## 1 249.97±103.22## 1 019.53±74.42# 203.01±19.94## 1 159.53±136.89##1 703.13±122.12#OPCRR高剂量组 382.07±53.02## 1 293.69±92.88## 945.51±156.20## 208.76±14.29## 1 246.66±126.81# 1 649.25±230.32#

3 讨 论

AS已经成为严重影响人类生命安全的慢性疾病之一，因此成功建立动物AS模型对于研究其预防和治疗效果具有十分重要的意义。研究表明AS主要表现为动脉壁钙化和动脉壁上的脂质沉积[17]，高脂乳剂主要成分为胆固醇、丙基硫氧嘧啶、去氧胆酸钠、猪油等，可以升高动物体内TC和TG含量，破坏甲状腺功能，促进胆固醇的吸收，进而诱发高脂血症；而VD3作为一种钙离子诱导剂[18]，可使血钙升高，诱发高钙血症[19]，两者协同使动脉管壁的完整受到破坏，引起动脉内皮通透性升高，脂蛋白及单核细胞浸润内膜，进而堆积成AS斑块[20]。本实验通过连续3 d灌胃VD3 40万 IU/（kg·d），辅助高脂乳剂（猪油20%（质量分数，下同）、丙二醇20%、吐温-80 20%、胆固醇10%、去氧胆酸钠2%、丙硫氧嘧啶1%）灌胃，经过8 周，成功获得了大鼠AS模型，为研究的开展提供了前提条件。

原花青素除具有显著的抗氧化作用外，还具有抑制LDL形成、改善脂质代谢紊乱的作用，这可能就是原花青素对血管具有保护作用的原因。许多研究表明，高脂血症是诱发AS的一个必要条件，有研究者认为，体内的TC、TG水平升高后，与LDL或VLDL结合成LDL-c或VLDL-c被运送到动脉管壁[21]，脂蛋白会堆积在动脉血管壁，AS过程即开始启动，随后经过慢性炎症反应，AS过程加速发展[22]；因此，改善脂质代谢水平，是缓解AS的一个关键途径。姜岩等[23]研究了葡萄籽原花青素对冠状AS的防御作用，结果表明葡萄籽原花青素可以降低Wistar雄性大鼠的TC、TG和LDL-c的水平，同时提高HDL-c的水平，从脂质代谢途径调控AS；Zhang Kexia等[24]用柿蒂类黄酮化合物对AS大鼠进行干预，结果显示大鼠体内TC、TG、LDL-c和HDL-c指标水平均有所改善，并具有增加载脂蛋白A1表达量和降低血清载脂蛋白B的作用，且主动脉切片结果证明柿类黄酮化合物确实对AS有保护作用。本实验以OPCRR为研究对象，干预AS Wistar雄性大鼠肝脏中的脂质代谢，最终结果与上述文献具有相同的趋势，说明OPCRR具有通过调节脂质代谢而缓解AS的效果。

(1)定制开发，山西大学图书馆、中国医学科学院图书馆均使用开发工具定制了认证系统，需要开发用户注册、管理、认证等整套模块。

肝脏在脂质代谢的过程中起着重要的作用，其主要功能是合成脂蛋白和促进脂质运输。发生AS时，往往伴随着脂肪肝等肝脏疾病的出现，原因是胆固醇排泄的主要途径是胆汁酸的排泄，过度摄入的脂肪会导致肝脏不能正常代谢甚至肝损伤，脂肪会堆积在肝脏，影响肝细胞的功能、造成结缔组织增生，最终导致肝硬化。AS通常会导致体内脂质代谢紊乱，甚至会导致脂肪肝。李向阳等[25]研究了金钗石斛多糖对高脂血症大鼠肝脏脂肪变性的影响，证明了高脂血症可以引发肝脏脂肪变性，且通过切片证实，金钗石斛多糖可以从肝小叶结构、肝细胞形态、变性程度等多方面对肝脏进行保护；李国娟等[26]研究也证明了过氧化物酶增值物激活受体γ激活蛋白1-α（peroxisome proliferator-activated receptor γ coactivator 1-α，PGC-1α）增加可以促进胆固醇的分解和胆汁的分泌，调节血脂代谢，所以增加AS大鼠肝脏中PGC-1α的表达可以保护心血管，抑制AS的形成。本研究的HE染色结果表明，OPCRR可以改善AS大鼠的肝细胞形态，保护肝脏结构，减少肝组织中的炎性灶，缓解肝损伤和变性的发生。

自由基引发脂质过氧化是AS形成的重要原因之一。盛冲霄等[27]发现，氧化应激是诱发颈部AS的一个重要原因，其中活性氧积聚，与血管舒张因子NO之间的平衡被打破，引起内皮功能障碍，是AS开始形成的关键。近年来，实验证明，多种炎症细胞因子的过度释放也是导致AS的一个关键原因[28]，血液中的LDL-c是一种炎性诱导剂，可诱导黏附因子（ICAM-1和VCAM-1）增加聚集到AS早期病变区形成AS[29]；另一种在AS的发展阶段中起关键性作用的炎症细胞因子是MCP-1，它主要是吸引其他多种炎症细胞黏附到AS病变区域，促进AS的形成[30]；此外参与AS过程的还有IL-1β、IL-6、IL-10和TNF-α等促炎性因子。何忠梅等[31]利用短梗五加果多酚减少了多种炎性细胞因子的表达，并缓解了SD大鼠AS的情况，与本实验证明的OPCRR可以显著降低Wistar大鼠肝脏中各炎症因子水平的结果相似。

2.4 各组间生命体征比较T0时的RR、HR、MAP、SpO2比较，差异均无统计学意义（P＞0.05）。 各组患者T1-T3时的RR、MAP、HR、 均低于同组T0时，且T1、T2时 A 组患者 SpO2低于 B、C、D、E 组， 差异均有统计学意义 （P＜0.05）；T1-T3其余指标各组间比较，差异均无统计学意义（P＞0.05）。见表4。

4 结 论

本实验以OPCRR为研究对象，采用VD3联合高脂乳剂方法可成功建立大鼠AS模型，研究了其对AS大鼠肝脏的保护作用及作用机制。结果显示，OPCRR可以通过改善脂质代谢、提高抗氧化能力和抑制细胞炎症因子来干预AS大鼠脂肪肝的形成，明显改善大鼠肝脏结构形态，缓解由AS造模过程产生的肝损伤。而关于OPCRR是如何通过调节相关信号通路来抑制AS的形成需进一步进行研究。

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Hepatoprotective Effect of Oligomeric Procyanidins from Rhodiola rosea L. in Atherosclerotic Rats

HAN Xue, ZHOU Qian, NIU Jiahui, WU Mengying, WANG Yaxu, YUAN Jing, ZHAO Wen*
（College of Food Science and Technology, Agricultural University of Hebei, Baoding 071001, China）

Abstract: Objective: To study the hepatoprotective effect and underlying mechanism of oligomeric procyanidins from Rhodiola rosea L. （OPCRR） in rats with atherosclerosis （AS）. Methods: A rat model of AS was established by orally administering vitamin D3 and a high-fat emulsion simultaneously. The animals were divided into negative control, AS model, positive control （curcumin at 50 mg/kg mb）, and low-, medium- and high-dose OPCRR （60, 120 and 240 mg/kg mb）groups. After administration for8 consecutive weeks, we determined the changes in liver histology, lipids, oxidative stress and inf l ammatory cytokines in order to evaluate the effectiveness of OPCRR in alleviating AS. Results: Compared with the AS model group, OPCRR signif i cantly reduced the serum levels of total cholesterol （TC）, triglyceride （TG）, and low density lipoprotein cholesterol （LDL-c）, and signif i cantly increased serum high density lipoprotein cholesterol （HDL-c） level（P ＜ 0.05）. Meanwhile, OPCRR signif i cantly reduced AS index, and it improved the morphology of liver cells, protected the structure of hepatic lobules, signif i cantly reduced the number of inf l ammatory foci and cell degeneration in the liver,and attenuated liver cell damage. Hepatic TC, TG, LDL-c and very low density lipoprotein cholesterol levels dropped signif i cantly, and HDL-c signif i cantly increased in the OPCRR-treated rats compared with the model control group （P ＜0.05）; malondialdehyde level in the liver signif i cantly reduced, and the activities of superoxide dismutase and glutathione peroxidase increased signif i cantly （P ＜ 0.05）. At the same time, the levels of hepatic inf l ammatory cytokines （interleukin（IL）-1β, IL-6, IL-10, tumor necrosis factor-α, monocyte chemoattractant protein-1 and intercellular cell adhesion molecule-1）signif i cantly decreased （P ＜ 0.05）. Conclusion: OPCRR can protect the liver of AS rats by regulating lipid metabolism,oxidative stress and inf l ammation in the liver, and its effect is better than that of curcumin.

Keywords: oligomeric procyanidins; Rhodiola rosea L.; atherosclerosis; liver